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Vol. 104. Núm. 10.
Páginas 904-914 (diciembre 2013)
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Vol. 104. Núm. 10.
Páginas 904-914 (diciembre 2013)
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Estudio retrospectivo de las características clínicas, histológicas e inmunológicas en una serie de 9 pacientes con epidermólisis ampollosa adquirida
Retrospective Study of the Clinical, Histologic, and Immunologic Features of Epidermolysis Bullosa Acquisita in 9 Patients
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A. Barreiro-Capurro, J.M. Mascaró-Galy, P. Iranzo
Autor para correspondencia
PIRANZO@clinic.ub.es
piranzof@gmail.com

Autor para correspondencia.
Servicio de Dermatología, Hospital Clínic, Universitat de Barcelona, Barcelona, España
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Tabla 1. Características clínicas e inmunopatológicas de los pacientes con epidermólisis ampollosa adquirida
Tabla 2. Tratamientos/respuesta
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Resumen
Introducción

La epidermólisis ampollosa adquirida es una enfermedad ampollosa subepidérmica autoinmune causada por autoanticuerpos contra el colágeno vii. Su clínica es heterogénea con afectación de la piel y las mucosas, pudiendo generar secuelas invalidantes. Existen diversas opciones terapéuticas frecuentemente insatisfactorias.

Objetivo

Revisar los casos de epidermólisis ampollosa adquirida diagnosticados durante un periodo de 26 años.

Material y métodos

Estudio retrospectivo de las características clínicas e inmunopatológicas de 9 pacientes con dicho diagnóstico.

Resultados

La mediana de edad de presentación fue de 37 años, el 66,67% de pacientes fueron mujeres. Asociaciones: neoplasias malignas, enfermedad inflamatoria intestinal y procesos autoinmunes. La variante inflamatoria fue la más frecuente (6/9). La histología mostró constantemente una ampolla subepidérmica y la inmunofluorescencia directa la presencia de depósitos lineales de IgG y C3 en la membrana basal. La inmunofluorescencia indirecta fue positiva en 6 pacientes, mostrando en todos ellos un patrón dérmico en piel separada. En 5 pacientes se determinaron los anticuerpos contra el colágeno vii por Enzyme-Linked Immuno Sorbent Assay, de los cuales 2 fueron positivos, e Inmunoblot con NC1 recombinante en 6 casos, positivo en todos ellos. La respuesta terapéutica fue variable.

Conclusiones

Se trata de una enfermedad rara, de clínica heterogénea, que puede inducir a confusión con otras enfermedades ampollosas subepidérmicas. Se requiere un alto índice de sospecha y el empleo de todos los métodos disponibles para establecer su diagnóstico. La correcta evaluación de la afectación cutáneo-mucosa y la instauración precoz de la terapéutica adecuada permitirá la detección de sus secuelas y de las complicaciones del tratamiento.

Palabras clave:
Epidermólisis ampollosa adquirida
Enfermedad ampollosa subepidérmica autoinmune
Abstract
Introduction

Epidermolysis bullosa acquisita (EBA) is an autoimmune subepidermal blistering disease caused by autoantibodies to type VII collagen. The clinical presentation is variable, with skin and mucosal lesions that can cause significant dysfunction. Different treatment options exist, but the results are often unsatisfactory.

Objective

To review all the cases of epidermolysis bullosa acquisita (EBA) diagnosed at our hospital over a 26-year period.

Materials and methods

We performed a retrospective review of the clinical, histologic, and immunologic features of EBA in 9 patients.

Results

Mean age at presentation was 37 years and 66.67% of the patients were women. EBA occurred in association with malignant tumors, inflammatory bowel disease, and autoimmune disorders. The most common variant was inflammatory EBA (6 of the 9 cases). In all 9 patients, histology revealed a subepidermal blister and direct immunofluorescence showed linear deposits of immunoglobulin G and C3 in the basement membrane zone. Indirect immunofluorescence performed on salt-split skin substrate was positive in 6 patients and showed a dermal pattern in all cases. Five patients were tested for autoantibodies to type VII collagen using enzyme-linked immunosorbent assay, with positive results in 2 cases. Immunoblotting using recombinant noncollagenous domains (NC1) of type VII collagen was positive in all 6 cases in which it was performed. Response to treatment was variable.

Conclusions

EBA is a rare disease with a variable clinical presentation that can be confused with that of other subepidermal blistering diseases. Correct diagnosis requires a high level of clinical suspicion and the use of all available diagnostic tests. Thorough evaluation of cutaneous and mucosal involvement and prompt initiation of appropriate treatment will ensure the detection and prevention of dysfunction and treatment-related complications.

Keywords:
Epidermolysis bullosa acquisita
Autoimmune subepidermal bullous disease
Texto completo
Introducción

La epidermólisis ampollosa adquirida (EAA) es una enfermedad ampollosa subepidérmica crónica que afecta la piel y mucosas1–3. Fue descrita originalmente por Roenigk et al.1, en 1971 como un cuadro mecano-ampolloso (asociado a fragilidad cutánea), semejante a la epidermólisis ampollosa congénita, pero de inicio en la edad adulta y sin antecedentes familiares. En 1973 Kushniruk et al.4 describen la presencia de depósitos de IgG y C3 en la membrana basal en el examen de inmunofluorescencia directa (IFD) en la piel de estos pacientes. Yaoita et al.5 en 1981 demostraron por inmunomicroscopia electrónica la localización de los depósitos en la sublámina densa en la EAA y en la lámina lúcida en el penfigoide ampolloso. En 1984 Woodley et al.6 describen una proteína de 290 KDa como la diana antigénica en la EAA, que posteriormente se identificó como colágeno vii7. Posteriormente se describió una variedad inflamatoria con características clínicas similares al penfigoide ampolloso y otros subtipos que remedaban el penfigoide de mucosas o el penfigoide cicatricial de Brunsting-Perry8–10. Durante el curso de la enfermedad puede haber una transformación de una presentación clínica a otra o coexistir rasgos de ambas11.

Se trata de una enfermedad poco frecuente, con una incidencia estimada de 0,2 casos/millón de habitantes2,3. Debido a la baja prevalencia no se ha podido establecer si existe predilección racial, aunque se ha documentado una mayor prevalencia en individuos de raza negra y en coreanos12,13. La edad de inicio suele ser entre los 40 y 50 años, aunque se han descrito casos en ancianos, en niños, así como un caso congénito por trasmisión vertical de una madre afecta14–16.

La etiología de la EAA es desconocida, pero el papel de los anticuerpos contra el colágeno vii en el desarrollo de la enfermedad parece evidente. La patogenicidad de estos anticuerpos ha sido demostrada por la aparición de ampollas en una recién nacida por la transferencia materno-fetal de dichos anticuerpos a partir de la sangre de su madre afecta de EAA. También se ha podido evidenciar ex-vivo: la incubación de criosecciones de piel humana con el suero de pacientes con EAA, en presencia de neutrófilos, produce una separación dermoepidérmica. El desarrollo de diferentes modelos in vivo mediante inmunización pasiva (transferencia de IgG anti-colágeno vii humano o de conejo a ratones) o activa (inmunización de determinadas estirpes de ratones con fragmentos inmunodominantes del NC1 del colágeno vii) ha permitido producir formas de EAA experimental16–19.

Histológicamente, las formas de EAA clásicas mecano-ampollosas se caracterizan por la presencia de ampollas subepidérmicas con escaso infiltrado inflamatorio. En las formas de EAA inflamatoria los infiltrados inflamatorios son de mayor intensidad, con la presencia de abundantes neutrófilos y en ocasiones de eosinófilos. La IFD muestra depósitos lineales, predominantemente de IgG, a lo largo de la membrana basal dermoepidérmica. En algunos pacientes también se pueden observar depósitos de C3, IgA, o IgM de intensidad variable4,5,20. El examen con inmunofluorescencia indirecta (IFI) permite detectar, en algunos pacientes, la presencia de autoanticuerpos circulantes en el suero de tipo IgG dirigidos contra la membrana basal dermoepidérmica. Se pueden emplear diferentes sustratos, como la piel humana o el esófago de mono5, pero los mejores resultados se obtienen empleando piel humana separada con cloruro sódico (NaCl) 1M. Con esta última técnica se puede demostrar la unión de los autoanticuerpos en la EAA a la porción dérmica (suelo) de la separación, a diferencia de lo que sucede en el penfigoide ampolloso, donde se unen a la porción epidérmica de la separación. Aunque este método relativamente sencillo permite diferenciar la EAA del penfigoide ampolloso, no la diferencia de otras enfermedades ampollosas autoinmunes subepidérmicas con patrón dérmico (lupus eritematoso ampolloso, penfigoide anti-laminina-332, penfigoide anti-γ1-laminina o penfigoide p: anti p105)21. En aquellos casos en los que la IFI es negativa se puede realizar una IFD previa separación de la biopsia con NaCl 1M (o en biopsia de una ampolla provocada por succión). Dicha técnica muestra la localización de los depósitos de IgG en la porción dérmica de la membrana basal separada en la EAA, pero al igual que la IFI no permite la diferenciación de otras enfermedades con patrón dérmico22. Recientemente se ha descrito también el valor diagnóstico del patrón morfológico de los depósitos de anticuerpos en la membrana basal. En el caso de que los depósitos de IgG estén por encima de la sublámina densa (penfigoide ampolloso, penfigoide anti-laminina-332) se observa un patrón serrado con configuración en n (n-serrado). Si los depósitos se sitúan en la sublámina densa (EAA) el patrón serrado adopta una configuración en u (u-serrado). Esta técnica requiere que los cortes sean de menos de 4μm de grosor23.

Cuando se realiza el análisis del suero de los pacientes con EAA mediante técnicas de inmunoblot utilizando extractos dérmicos, estos identifican unas bandas proteicas de aproximadamente 290-kDA y 145-kDA, correspondientes al colágeno vii completo (dímero) o a una de sus regiones (monómero). La mayoría de los epítopos antigénicos del colágeno vii se localizan en la porción NC1 (de 145-kDA). Por dicho motivo se puede emplear también la proteína recombinante NC1 producida en el laboratorio para realizar el análisis por Inmunoblot, o mediante la técnica de ELISA. La ELISA con NC1 recombinante es bastante más sensible y específica que la IFI con piel separada o el Inmunoblot con extractos dérmicos, y permite además cuantificar la cantidad de anticuerpos24. Recientemente se ha desarrollado una técnica con colágeno vii total (que incluye tanto la región NC1, como la NC2) que es ligeramente más sensible que la técnica con NC125.

El método diagnóstico considerado idóneo es la microscopia inmunoelectrónica, dado que permite identificar la localización de los depósitos de inmunoglobulinas: en la sublámina densa en la EAA y en la lámina lúcida y en los hemidesmosomas en el penfigoide ampolloso5,20. Sin embargo, se trata de una técnica complicada, disponible en muy pocos centros.

La correlación de la clínica con el resultado de los diferentes métodos diagnósticos permite establecer con cierta seguridad el diagnóstico de EAA, pero no diferenciarlo del lupus eritematoso sistémico ampolloso (LESA), ya que ambas enfermedades presentan anticuerpos patógenos frente al colágeno vii26. En el LESA deben cumplirse los criterios de LES del American College of Rheumatology, las lesiones predominan en zonas fotoexpuestas y su curso es menos refractario que el de la EAA27.

Por lo que respecta al tratamiento de la EAA se han empleado diversos tratamientos frecuentemente ineficaces y de respuesta imprevisible, existen pocas series largas de pacientes y no hay estudios aleatorizados en esta enfermedad dada su infrecuencia3,28.

En el presente trabajo hemos analizado las características demográficas, clínicas, inmunopatológicas, así como la respuesta terapéutica de una serie de pacientes con EAA diagnosticados durante el periodo comprendido entre los años 1985 y 2011 en nuestra institución.

Pacientes y métodos

Se estudiaron retrospectivamente todos los pacientes diagnosticados de EAA en el Hospital Clínic de Barcelona en el periodo comprendido entre los años 1985 y 2011 en función de criterios clínicos, histológicos e inmunopatológicos. Se analizaron todos los datos demográficos, clínicos, inmunopatológicos y terapéuticos disponibles.

La IFI empleando piel humana separada NaCl 1M, según la técnica convencional, se realizó utilizando el suero obtenido en una fase de actividad21. La IFD con piel separada se practicó según la técnica descrita por Gammon22. Los estudios de Inmunoblot se realizaron utilizando extractos dérmicos y en algunos casos también proteínas recombinantes codificando para la fracción NC1 del colágeno vii. La técnica de ELISA se realizó utilizando diferentes moléculas recombinantes del colágeno vii (His-hCVII-NC1 y NC2-His-hCVII-NC1 NC2-H) según el procedimiento descrito por los autores25.

Resultados

Identificamos 9 pacientes con diagnóstico de EAA durante el periodo 1985-2011. La mediana de edad de presentación fue de 37 años, 3 varones y 6 mujeres (relación hombre:mujer de 1:2). La mediana de tiempo transcurrido hasta el diagnóstico fue de 7 meses (rango de 1 a 72 meses).

La forma de presentación más frecuentemente observada fue la inflamatoria (6/9) (fig. 1). La variedad clásica mecano-ampollosa ocurrió en los pacientes de edad más avanzada (todos ellos mayores de 72 años) (fig. 2). En un paciente se produjo un cambio de fenotipo clínico de penfigoide ampolloso a penfigoide de Brunsting-Perry (caso 5 [tabla 1]). Solo en 2 casos la afectación fue exclusivamente cutánea. De los 7 pacientes con compromiso de mucosas todos mostraron afectación oral, 2 de ellos genital, 2 conjuntival y un paciente afectación faríngea, laríngea y esofágica.

Figura 1.

A. Variante clínica clásica: cicatrices en zonas de fricción, presencia de quistes de millium. B. Hematoxilina-eosina (×40), ampolla subepidérmica. C. Hematoxilina-eosina (×100), escaso infiltrado inflamatorio.

(0.38MB).
Figura 2.

A. Variante clínica inflamatoria, tipo penfigoide ampolloso. B. Hematoxilina-eosina (×40): ampolla subepidérmica. C. Hematoxilina-eosina (×100): infiltrado inflamatorio importante con predominio de neutrófilos y escasos eosinófilos.

(0.24MB).
Tabla 1.

Características clínicas e inmunopatológicas de los pacientes con epidermólisis ampollosa adquirida

Sexo/edad al diagnósticoa  Tiempo previo al diagnósticob  Antecedentes patológicosFenotipo  Mucosas  Histología 
      Neoplasia  Enfermedades autoinmunes  EII  Otras enfermedades       
M/77  24  No  No  No  DMNID, HTA, DL  No inflamatorio  Oral  Ampolla subepidérmica con escasa reacción inflamatoria 
V/74  12  Adenocarcinoma bronquial  No  No  DMNID, EPOC,talasemia, CH VHC, IgG lambda monoclonal  No inflamatorio  No  Ampolla subepidérmica con escasa reacción inflamatoria 
M/37  72  Carcinoma de cérvix, adenocarcinoma de pulmón  Anemia hemolítica Coombs+,AAN 1:160, antiADN 22  No  No  Inflamatorio  Oral, genital, faríngea, laríngea  Ampolla subepidérmica con abundantes neutrófilos, eosinófilos y leucocitoclasia 
V/34  No  No  Colitis ulcerosa  No  Inflamatorio  No  Espongiosis eosinofílica 
V/32  60  No  Tiroiditis autoinmune  Enfermedad de Crohn  No  Inflamatorio  Oral, conjuntival  Ampolla subepidérmica con abundantes neutrófilos y eosinófilos. Formación de microabscesos papilares 
M/26  No  AAN 1:320 moteado  No  Asma  Inflamatorio  Oral  Ampolla subepidérmica con abundantes neutrófilos y eosinófilos 
M/64  Melanoma, adenocarcinoma de mama, poroma ecrino  AAN 1:160, neuritis óptica autoinmune, liquen plano  No  Osteoporosis, EPOC, rinitis alérgica  Inflamatorio  Oral, genital  Espongiosis eosinofílica 
M/19  No  AAN 1:1280, anti ADN débil, anti Ro+  No  Artritis  Inflamatorio  Oral, esofágica  Ampolla subepidérmica con abundantes neutrófilos 
M/72  No  No  No  Hepatitis tóxica  No inflamatorio  Oral, conjuntival  Ampolla subepidérmica con escasa reacción inflamatoria 
InmunofluorescenciasELISA col vii  Inmunoblot 
  IFD  IFD piel separada  IFI piel separada     
IgG, C3  NR  Dérmico,1:320  NR  Laminina 332 (IgG4)- negativo, Colágeno vii (NC1 para IgG1, IgG3, IgG4)-positivo 
IgG, IgM, C3  Dérmico  Negativa  Negativo  Anti laminina 332 (IgG4)- negativo, Colágeno vii (NC1 para IgG1, IgG3, IgG4)-positivo 
IgG, IgA, C3  NR  Dérmico,IgA e IgG 1:320  Positivo  NC1: IgG4 ++ IgA positivo 
IgG, C3  Dérmico  Negativa  NR  Laminina 332 (IgG4)- negativo Colágeno vii (NC1 para IgG1, IgG3, IgG4)-positivo 
IgG, IgA, C3  Dérmico  Dérmico, 1:160  Negativo  Laminina 332- negativo, Colágeno vii (NC1 para IgG1, IgG3, IgG4)-negativo 
IgG, IgA, C3  Dérmico  NR  NR  NR 
IgG, C3  Dérmico  Dérmico, 1:20  Positivo  NR 
IgG, IgM, IgA, C3, fibrinógeno  Dérmico  Dérmico, 1:20 (AAN dermoepidérmico)  Negativo  NC1:IgG1-IgG4-IgA Colágeno vii positivo 
IgG, C3  NR  Dérmico  NR  NR 

AAN: anticuerpos antinucleares; CH por VHC: cirrosis hepática por virus de hepatitis C; DL: dislipidemia; DMNID: diabetes mellitus no insulinodependiente; EII: enfermedad inflamatoria intestinal; ELISA col VII: enzime-linked immunoabsorbent assay for collagen VII; EPOC: enfermedad pulmonar obstructiva crónica; HTA: hipertensión arterial. IFD: inmunofluorescencia directa; IFI: inmunofluorescencia indirecta; NR: no realizado.

aAño; bMeses.

Al revisar la asociación con otras enfermedades y procesos destacó una asociación frecuente a neoplasias malignas (5 neoplasias en 3 pacientes: 2 de pulmón, un carcinoma de cérvix, uno de mama y un melanoma maligno), enfermedad inflamatoria intestinal (EII) (una enfermedad de Crohn y una colitis ulcerosa), así como procesos autoinmunes o autoanticuerpos circulantes (una anemia hemolítica, una neuritis óptica, una tiroiditis, 4 anticuerpos antinucleares [AAN] positivos) (tabla 1).

En todos los casos de EAA con la forma clásica el examen histológico mostró una ampolla subepidérmica con infiltrado inflamatorio muy escaso. En los 6 pacientes con clínica inflamatoria se apreció un infiltrado formado por abundantes neutrófilos y eosinófilos, con presencia ocasional de microabscesos en la dermis papilar. En 2 casos se observó espongiosis eosinofílica. En el estudio de IFD fue constante la presencia de depósitos lineales de IgG y de C3 en la membrana basal, de intensidad variable (fig. 3). En 5 (56%) existían además depósitos de otros conjugados (tabla 1). En 8 de los pacientes se realizó la IFI en piel humana separada con NaCl 1M, resultando positiva con patrón dérmico en 6 de ellos (75%) (fig. 4). En uno de los pacientes (caso 6 [tabla 1]) el examen de IFI se realizó en otro centro, mostrando exclusivamente la presencia de ANA, y no dispusimos de suero para realizar el estudio en piel separada. La IFD con piel separada se practicó en 6 de los pacientes mostrando en todos ellos (incluyendo los 2 casos con IFI negativa y la paciente en la que no se practicó estudio de IFI), un patrón exclusivamente dérmico de los depósitos de IgG.

Figura 3.

Inmunofluorescencia directa con un patrón característico de epidermólisis ampollosa adquirida (×200), depósitos lineales intensos de IgG (A) y muy tenues de C3 (B) a lo largo de la unión dermoepidérmica.

(0.06MB).
Figura 4.

Inmunofluorescencia indirecta con piel separada con NaCl 1M (×200), los anticuerpos están dirigidos contra la parte dérmica (suelo de la ampolla).

(0.14MB).

En 5 pacientes se realizó ELISA para colágeno vii, siendo positivo en 2 (40%). En 6 pacientes se practicó estudio de Inmunoblot resultando positivo en 5 (83%) de ellos (tabla 1) (fig. 5). Se detectó la presencia de ANA en 4 pacientes (44%), en una de ellas como hallazgo aislado (caso 6 [tabla 1]), en 2 en asociación con otras enfermedades autoinmunes (casos 3 y 7 [tabla 1]). La paciente 8 (tabla 1), a pesar de tener ANA y anti-ADN positivos, no cumplió en ningún momento de su evolución los criterios de LES de la American College of Rheumatology. En esta paciente, además, la falta de respuesta a corticoides y dapsona a dosis altas y la buena respuesta al tratamiento con inmunoglobulina intravenosa (IGIV) asociada a colchicina, nos inclinó a considerar el diagnóstico de EAA más que el de LESA, si bien ambos procesos tienen características inmunológicas semejantes y existe un cierto solapamiento.

Figura 5.

Inmunoblot con proteínas recombinantes (paciente 3). Se observa una banda de 145kD (correspondiente a la región NC1 del colágeno vii).

CN: control negativo; CP: control positivo; P: suero paciente.

(0.11MB).

Se realizaron diversos tratamientos desde el momento del diagnóstico con respuesta clínica variable en la mayoría de los pacientes y difícil control de la enfermedad en 2 casos (casos 3 y 5 [tabla 2]). La paciente número 3 inició tratamiento con prednisona a dosis de 1mg/kg/día con respuesta parcial, se añadió colchicina 1mg/12h y posteriormente dapsona 100mg/día con poco resultado, por lo que se inició tratamiento con IGIV a dosis altas (2g/kg), y ante la falta de respuesta se añadió prednisona y colchicina con control parcial de la enfermedad. En el curso de su enfermedad se detectó un adenocarcinoma pulmonar con posterior desarrollo de metástasis y desenlace fatal. El caso número 5, el más refractario de todos, realizó diversos tratamientos suspendidos bien por efectos adversos bien por falta de respuesta; en diciembre de 2007 recibió tratamiento con rituximab (375mg/m2/semana, 4 semanas) con buena respuesta cutánea, pero persistiendo la gingivitis erosiva. Actualmente se encuentra en remisión completa con dosis mínimas de corticoides, dapsona y colchicina. Destacamos la excelente respuesta a las IGIV de una paciente con la forma clásica que fue refractaria a todos los tratamientos previos (caso 1 [tabla 2]).

Tabla 2.

Tratamientos/respuesta

Paciente  Corticoides  Colchicina  Dapsona  IGIV (2g/kg)  Infliximab  Aza  Mtx  Cya  Rituximab  Respuesta terapéutica 
PDN 30mg/sin respuesta  No tolerancia  Sin respuesta  RC  No  No  No  No  No  RC sin tratamiento 
No  1mg/RC  No  No  No  No  No  No  No  RC sin tratamiento 
PDN 50mg/RP  2mg/RP  100mg/RP  RP (+PDN+colchicina)  No  No  No  No  No  RP con tratamiento 
PDN 30mg/RP  No  100mg/RC  No  No  No  No  No  No  RC con tratamiento 
PDN 30mg/sin respuesta  No tolerancia  100mg/metahemoglobinemia  RP  RP  Sin respuesta  Sin respuesta  No  RP  RC con tratamiento 
PDN 15mg, deflazacort 60mg/RP  No  100mg/RC  No  No  No  No  No  No  RC sin tratamiento 
PDN 25mg/RC  No  50mg/RC  No  No  No  No  No  No  RC con tratamiento 
PDN 60mg/RP  1mg/RC  150mg/sin respuesta  RC  No  No  No  No  No  RC con tratamiento 
MTP 60mg, PDN 10mg/sin respuesta  No  No  No  No  Sin respuesta  No  No valorable exitus  No  No valorable (exitus por TEP) 

AZA: azatioprina; CyA: ciclosporina; IGIV: inmunoglobulinas intravenosas; MTP: metilprednisolona; MTX: metotrexato; PDN: prednisona; RC (respuesta completa) sin tratamiento: ausencia de lesiones en un periodo mínimo de 2 meses; RC con tratamiento: ausencia de lesiones con tratamiento mínimo (igual o equivalente a 8mg/d metilprednisolona con o sin dapsona o colchicina por mínimo de 2 meses); RP (respuesta parcial) sin tratamiento: lesiones nuevas transitorias que curan en una semana sin tratamiento por un mínimo de 2 meses; RP con tratamiento mínimo: lesiones nuevas transitorias que curan en una semana en paciente con tratamiento mínimo. TEP: tromboembolismo pulmonar.

Discusión

La EAA es una enfermedad poco frecuente que afecta predominantemente a adultos1–3. En nuestro estudio la mediana de edad en el momento del diagnóstico fue de 37 años, y encontramos un predominio en mujeres, al igual que en las 4 únicas series publicadas29–32.

La forma clásica mecano-ampollosa corresponde a la que se reportó en la descripción original de la EAA. Tiene un fenotipo bastante característico que facilita la orientación diagnóstica; sin duda por ello la mayoría de los casos inicialmente publicados correspondían a esta presentación clínica. Desde la descripción de la variedad inflamatoria se ha documentado un incremento progresivo de casos diagnosticados de esta forma. Posiblemente el mayor conocimiento de la EAA y el empleo adecuado de los métodos diagnósticos disponibles ante la sospecha clínica ha permitido establecer este diagnóstico en pacientes que de otra forma serían diagnosticados de penfigoide ampolloso. La variedad clínica más frecuente en nuestra serie fue la inflamatoria, al igual que en las series recientemente publicadas. Sin embargo, hemos observado un predominio de la forma clásica en los pacientes de edad mas avanzada, lo que no se ha descrito en los otros estudios29–32. No tenemos una explicación para este hallazgo y el bajo número de pacientes no permite obtener conclusiones al respecto. La asociación de la EAA con otras enfermedades es bien conocida, siendo probablemente la más establecida la EII, y en particular la enfermedad de Crohn1,3. La presencia de colágeno vii en el epitelio intestinal podría explicar esta asociación como un fenómeno de expansión de epítopos, hipótesis apoyada por la presencia de anticuerpos circulantes contra el colágeno vii en aproximadamente un 68% de pacientes con enfermedad de Crohn (aunque no presenten enfermedad cutánea)33,34. En nuestra serie la incidencia de neoplasias fue superior a la de EII. Se han descrito casos aislados asociados a diferentes neoplasias, sin embargo ninguna de las series publicadas hasta ahora hace referencia a esta asociación. El curso de la enfermedad en nuestros pacientes no parece sugerir un proceso paraneoplásico. De hecho, las 3 neoplasias previamente conocidas estaban en remisión en el momento del inicio de la EAA. En la paciente 3 hubo un retraso diagnóstico de 72 meses, detectándose la neoplasia en el momento del establecimiento del diagnóstico en nuestro hospital; no recibió fármacos inmunosupresores que pudieran actuar como desencadenante. En el paciente 2 la neoplasia comenzó tras la remisión completa de la EAA y había sido tratado exclusivamente con colchicina.

Con respecto al examen histológico, tal como se ha documentado en la literatura, el grado de inflamación clínica se correlacionó con la intensidad del infiltrado inflamatorio. La IFD no permitió el diagnóstico diferencial de la EAA con el penfigoide ampolloso, a pesar de que, tal como está descrito, observamos a menudo una mayor intensidad de los depósitos de IgG respecto a los de C3, a diferencia de lo que sucede en el penfigoide, en el que los depósitos de C3 son más intensos35. La IFD con piel separada fue el método diagnóstico de mayor sensibilidad, mostrando un patrón dérmico en todos los pacientes estudiados. La IFI con piel separada fue negativa solo en 2 pacientes. En cuanto a los patrones morfológicos de inmunodepósito en IFD, serrados en «n» o en «u», no los pudimos valorar en nuestra serie, posiblemente debido a problemas técnicos como el grosor de las secciones. Es necesario comentar que en el caso 5 las pruebas realizadas no permiten una confirmación diagnóstica definitiva de EAA. La negatividad de los anticuerpos anti-BP 180, la afectación mucosa, la asociación con enfermedad de Crohn y el curso tórpido y refractario a los tratamientos sugieren un diagnóstico probable de EAA, aunque no descartamos que se trate de una EAA por IgA por no haber podido realizar ELISA para anticuerpos IgA, si bien el paciente mostraba depósitos de IgG en la membrana basal mucho más intensos que los de IgA y de C3.

La respuesta terapéutica fue muy variable y no siempre satisfactoria. Destacamos el excelente resultado de las IGIV en una paciente con una forma clásica que había sido refractaria a múltiples tratamientos previos (tabla 2). Basándonos en nuestra experiencia, nuestra propuesta terapéutica para la EAA sería iniciar prednisona 0,5mg/kg (o equivalente) asociando colchicina 1-2mg/día y/o dapsona 25-100mg/día. Si la respuesta permite la disminución de la dosis de prednisona hasta 5mg (o su supresión) se mantendría esta medicación. En caso de no poder disminuir la corticoterapia (a pesar de administrar dosis de hasta 100mg de dapsona y 2mg de colchicina) sugerimos añadir a dicho tratamiento las IGIV. Actualmente el uso de rituximab parece mostrar una eficacia superior (y un coste menor), por lo que en casos refractarios podría plantearse como una buena opción, si bien nuestra experiencia con este fármaco en EAA se limita a un solo paciente.

En resumen, presentamos la primera serie de EAA en España. Al igual que en las 4 únicas series publicadas incluyendo 38, 30, 14 y 12 casos29–32, observamos un predominio de las formas inflamatorias. Es importante en primer lugar la sospecha clínica y la optimización de los métodos diagnósticos disponibles que permitan establecer un diagnóstico de certeza. Lehman et al.36 proponen un algoritmo diagnóstico en enfermedades ampollosas autoinmunes, con valoración del coste de las diversas pruebas y el empleo racional de las mismas. Una vez establecido el diagnóstico debe realizarse una evaluación exhaustiva de la extensión de la enfermedad y detección de posibles procesos patológicos asociados, e iniciar un tratamiento adecuado que permita la prevención de sus secuelas en aquellos casos con afectación ocular, de mucosa respiratoria o digestiva. La respuesta terapéutica a un fármaco determinado es poco valorable por tratarse de una enfermedad muy heterogénea.

Se trata de un estudio retrospectivo que incluye un número bajo de pacientes. Es necesario realizar estudios prospectivos multicéntricos que permitan un mejor conocimiento de los mecanismos implicados en esta enfermedad, de la eficacia de los diversos fármacos y establecer la individualización del tratamiento.

Responsabilidades éticasProtección de personas y animales

Los autores declaran que para esta investigación no se han realizado experimentos en seres humanos ni en animales.

Confidencialidad de los datos

Los autores declaran que han seguido los protocolos de su centro de trabajo sobre la publicación de datos de pacientes y que todos los pacientes incluidos en el estudio han recibido información suficiente y han dado su consentimiento informado por escrito para participar en dicho estudio.

Derecho a la privacidad y consentimiento informado

Los autores declaran que en este artículo no aparecen datos de pacientes.

Conflicto de intereses

Los autores declaran que no tienen ningún conflicto de intereses.

Agradecimientos

Al Dr. C. Sitaru por la realización de ELISA para colágeno vii. Al Dr. J. Herrero y al Dr. A. Guilabert por la realización de los Inmunoblots.

Bibliografía
[1]
H.H. Roenigk Jr., J.G. Ryan, W.F. Bergfeld.
Epidermolysis bullosa acquisita report of three cases and review of all published cases.
Arch Dermatol, 103 (1971), pp. 1-10
[2]
D. Hallel-Halevy, C. Nadelman, M. Chen, D. Woodley.
Epidermolysis bullosa acquisita: Update and review.
Clin Dermatol, 19 (2001), pp. 712-718
[3]
R. Gupta, D. Woodley, M. Chen.
Epidermolysis bullosa acquisita.
[4]
W. Kushniruk.
The immunopathology of epidermolysis bullosa acquisita.
Can Med Assoc J, 108 (1973), pp. 1143-1146
[5]
H. Yaoita, A. Briggaman, T.J. Lawley.
Epidermolysis bullosa acquisita: Ultrastructural and immunological studies.
J Invest Dermatol, 76 (1981), pp. 288-292
[6]
D.T. Woodley, R.A. Briggaman, E.J. O’Keefe, A.O. Inman, L.L. Queen, W.R. Gammon.
Identification of the skin basement-membrane autoantigen in epidermolysis bullosa acquisita.
N Engl J Med, 310 (1984), pp. 1007-1015
[7]
D.T. Woodley, R.E. Burgeson, G. Lunstrum, L. Bruckner-Tuderman, M.J. Reese, R.A. Briggaman.
The epidermolysis bullosa acquisita antigen is the globular carboxyl terminus of type VII procollagen.
J Clin Invest, 81 (1988), pp. 683-687
[8]
W.R. Gammon, R.A. Briggaman, D.T. Woodley, P.W. Heald, C.E. Wheeler Jr..
Epidermolysis bullosa acquisita-a pemphigoid like disease.
J Am Acad Dermatol, (1984), pp. 820-832
[9]
W.R. Gammon, R.A. Briggaman, C.E. Wheeler Jr..
Epidermolysis bullosa acquisita presenting as an inflammatory bullous disease.
J Am Acad Dermatol, 7 (1982), pp. 382-387
[10]
G. Kurzhals, W. Stolz, M. Meurer, J. Kunze, O. Braun-Falco, T. Krieg.
Acquired epidermolysis bullosa with the clinical feature of Brunsting-Perry cicatricial bullous pemphigoid.
Arch Dermatol, 127 (1991), pp. 391-395
[11]
N. Wiemw, J. Lambert, M. Moerman, M.L. Geerts, L. Temmerman, JMl. Naeyaert.
Epidermolysis bullosa acquisita with combined features of bullous pemphigoid and cicatricial pemphigoid.
Dermatology, 198 (1999), pp. 310-313
[12]
C. Zumelzu, C. Le Roux-Villet, P. Loiseau, M. Busson, M. Heller, F. Aucouturier, et al.
Black patients of African descent and HLADRB1*15:03 frequency overrepresented in epidermolysis bullosa acquisita.
J Invest Dermatol, 131 (2011), pp. 2386-2393
[13]
C.W. Lee.
Prevalences of subacute cutaneous lupus erytematosus and epidermolysis bullosa acquisita among Korean/oriental populations.
Dermatology, 197 (1998), pp. 187
[14]
C.J. Arpey, B.E. Elewski, D.K. Moritz, W.R. Gammon.
Childhood epidermolysis bullosa acquisita: Report of three cases and review of literature.
J Am Acad Dermatol, 24 (1991), pp. 706-714
[15]
C. Callot-Mellot, C. Bodemer, F. Caux, I. Bourgault-Villada, S. Fraitag, G. Goudié, et al.
Epidermolysis bullosa acquisita in childhood.
Arch Dermatol, 133 (1997), pp. 1122-1126
[16]
M.L. Abrams, A. Smidt, L. Benjamin, M. Chen, D. Woodley, A.J. Mancini.
Congenital epidermolysis bullosa acquisita: Vertical transfer of maternal autoantibody from mother to infant.
Arch Dermatol, 147 (2011), pp. 337-341
[17]
C. Sitaru, A. Kromminga, T. Hashimoto, E.B. Bröcker, D. Zillikens.
Autoantibodies to type VII collagen mediate Fc gamma-dependent neutrophil activation and induce dermal-epidermal separation in cryosections of human skin.
Am J Pathol, 161 (2002), pp. 301-311
[18]
C. Sitaru, S. Mihai, C. Otto, M.T. Chiriac, I. Hausser, B. Dotterweich, et al.
Induction of dermal-epidermal separation in mice by passive transfer of antibodies specific type VII collagen.
J Clin Invest, 115 (2005), pp. 870-878
[19]
C. Sitaru, M.T. Chiriac, S. Mihai, J. Büning, A. Gebert, A. Ishiko, et al.
Induction of complement-fixing autoantibodies against type VII collagen results in subepidermal blistering in mice.
J Immunol, 177 (2006), pp. 3461-3468
[20]
C. Nieboer, D.M. Boorsma, M.J. Woerdeman.
Epidermolysis bullosa acquisita: Immunofluorescence, electron microscopic and immunoelectron microscopic studies in four patients.
Br J Dermatol, 102 (1980), pp. 383-392
[21]
W.R. Gammon, R.A. Briggaman, A.O. Inman, L.L. Queen, C.E. Wheeler.
Differentiating anti lamina lucida and anti sublamina densa anti BMZ antibodies by indirect immunofluorescence on 1.0M sodium chloride separated skin.
J Invest Dermatol, 82 (1984), pp. 139-144
[22]
W.R. Gammon, C. Kowalewski, T.P. Chorzelski, V. Kumar, R.A. Briggaman, E.H. Beutner.
Direct immunofluorescence studies of sodium chloride separated skin in the differential diagnosis of bullous pemphigoid and epidermolysis bullosa acquisita.
J Am Acad Dermatol, 22 (1990), pp. 1990
[23]
R.M. Vodegel, M.F. Jonkman, H.H. Pas, M.C.J.M. de Jong.
U-serrated immunodeposition pattern differentiates type VII collagen targeting bullous diseases from other subepidermal bullous autoimmune diseases.
Br J Dermatol, 151 (2004), pp. 112-118
[24]
M. Chen, L.S. Chan, X. Cai, E.A. O’Toole, J.C. Sample, D.T. Woodley.
Development of ELISA for rapid detection of type VII collagen autoantibodies in epidermolysis bullosa acquisita.
J Invest Dermatol, 108 (1997), pp. 68-72
[25]
E. Licarete, S. Ganz, M.J. Recknagel, G. di Zenzo, T. Hashimoto, M. Hertl, et al.
Prevalence of collagen VII specific autoantibodies in patients with autoimmune and inflammatory diseases.
BMC Immunol, 13 (2012), pp. 16
[26]
J.E. Herrero-González, J.M. Mascaró Jr., C. Herrero, A. Dilling, D. Zillikens, C. Sitaru.
Autoantibodies from patients with BSLE inducing recruitment of leukocytes to the dermoepidermal junction and subepidermal splits in cryosections of human skin.
Arch Dermatol, 142 (2006), pp. 1513-1516
[27]
C. Camisa, H.M. Sharma.
Vesiculobullous systemic lupus erythematosus.
J Am Acad Dermatol, 9 (1983), pp. 924-933
[28]
N. Ishii, T. Hamada, T. Dainichi, T. Karashima, T. Nakama, S. Yasumoto, et al.
Epidermolysis bullosa acquisita: What's new?.
J Dermatol, 37 (2010), pp. 220-230
[29]
J.J. Buijsrogge, G.F. Diercks, H.H. Pas, M.F. Jonkman.
The many faces of epidermolysis bullosa acquisita after serration pattern analysis by direct immunofluorescence microscopy.
Br J Dermatol, 165 (2011), pp. 92-98
[30]
J.H. Kim, Y.H. Kim, S.C. Kim.
Epidermolysis bullosa adcquisita retrospective clinical analysis of 30 cases.
Acta Dermatol Venereol, 91 (2011), pp. 307-312
[31]
A.V. Marzano, E. Cozzani, D. Fanoni, O. de Pità, C. Vassallo, E. Berti, et al.
Diagnosis and disease severity assessment of epidermolysis bullosa acquisita by ELISA for anti-type VII collagen autoantibodies: An Italian multicentre study.
Br J Dermatol, 168 (2013), pp. 80-84
[32]
L. Delgado, V. Aoki, C. Santi, T. Gabbi, M. Sotto, C. Maruta.
Clinical and immunopathological evaluation of epidermolysis bullosa acquisita.
Clin Exp Dermatol, 36 (2011), pp. 12-18
[33]
M. Chen, E.A. O’Toole, J. Sanghavi.
Type VII collagen exists in human intestine and serves as an antigenic target in patients with inflammatory bowel disease.
J Invest Dermatol, 108 (1997), pp. 542
[34]
G. Hundorfean, M.F. Neurath, C. Sitaru.
Autoinmunity against type VII collagen in inflammatory bowel disease.
J Cell Mol Med, 10 (2010), pp. 403
[35]
B.R. Smoller, D.T. Woodley.
Differences in direct immunofluorescence staining patterns in epidermolysis bullosa acquisita and bullous pemphigoid.
J Am Acad Dermatol, 27 (1992), pp. 674-678
[36]
J. Lehman, M. Camilleri, L. Gibson.
Epidermolysis bullosa acquisita: Concise review and practical considerations.
Int J Dermatol, 48 (2009), pp. 227-233
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