Jorge Ocampo-Candiani. Madero y Gonzalitos, s/n. Mitras Centro 64460. Monterrey. México.
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Según la Organización Mundial de la Salud (OMS), cada año se presentan alrededor de 8 millones de casos nuevos y se calcula que existen 1.700 millones de personas infectadas. La TB pulmonar (TBP) ocupa el quinto lugar como causa de muerte a nivel mundial, ocasionando tres millones de muertes anuales. Hasta el 95 % de los casos de TBP se reportan en países en vías de desarrollo <a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bb0005"><span class="elsevierStyleSup">1</span></a>. Las formas extrapulmonares, incluyendo la TB cutánea (TBC) representan el 10-20 % de todos los casos. La TBC causa alrededor del 1,5 % de todas las formas de TB y es responsable del 0,1 al 1 % de todos los desórdenes cutáneos <a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bb0010"><span class="elsevierStyleSup">2,3</span></a>. La TBP mostró una incidencia a la baja durante el siglo xx. Sin embargo, a partir de la década de los ochenta y hasta la actualidad, el número de casos ha ido en aumento. La incidencia de TBC ha mostrado el mismo comportamiento. El sida, la aparición de cepas de <span class="elsevierStyleItalic">Mycobacterium tuberculosis</span> (Mtb) resistentes y el incremento en el uso de fármacos inmunosupresores son algunos de los responsables de este fenómeno <a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bb0005"><span class="elsevierStyleSup">1,4-7</span></a>.</p><p id="p0010" class="elsevierStylePara elsevierViewall">La falta de un diagnóstico oportuno ha sido otro factor importante que ha dificultado su control. El desarrollo de nuevas herramientas diagnósticas es uno de los componentes del Plan Mundial para Detener la Tuberculosis 2006-2015 y de la Nueva Estrategia Mundial para Detener la TB de la OMS, donde apoyan la medicina basada en la evidencia para el desarrollo de nuevas políticas en el diagnóstico de la TB. Como dato interesante, el mundo gasta alrededor de un billón de dólares (EUA) al año en el diagnóstico de la TB <a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bb0005"><span class="elsevierStyleSup">1,7</span></a>.</p><p id="p0015" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Los métodos diagnósticos disponibles van desde los muy simples y económicos hasta los muy complejos y costosos. Entre los primeros se encuentra la tradicional baciloscopia en el esputo, que aunque es el más usado tiene una baja sensibilidad y una especificidad variable. Los procedimientos más sofisticados, como los que usan la biología molecular, son muy específicos pero costosos y con sensibilidad variable; estos factores limitan su uso en los países de bajos recursos. La gran mayoría de los procedimientos diagnósticos disponibles tienen su mayor utilidad en la TBP <a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bb0040"><span class="elsevierStyleSup">8</span></a>. El objetivo de este trabajo es revisarlos y describir cómo pueden utilizarse en el diagnóstico de la TBC.</p></span><span id="s0010" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="st0010">Etiología y patogenia</span><p id="p0020" class="elsevierStylePara elsevierViewall">La TBP y la TBC están ocasionadas por Mtb y ocasionalmente por <span class="elsevierStyleItalic">M. bovis.</span> La infección habitualmente se adquiere por inhalación de la micobacteria, pero también puede ocurrir por ingestión o inoculación. La piel intacta provee una barrera efectiva contra la invasión por el microorganismo, pero cualquier solución de continuidad en la barrera mucocutánea facilita la entrada del mismo y, por tanto, de la infección. Posterior a la inhalación de los bacilos tuberculosos, aquellos contenidos en partículas aerógenas de 1-5<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>μ de diámetro son capaces de alcanzar el alveolo pulmonar y producir la infección pulmonar primaria, y de ahí su posible diseminación para producir las formas extrapulmonares, incluyendo la cutánea. La TBC puede ocurrir además por inoculación directa o por contigüidad con lesiones en otros tejidos como los ganglios, el hueso, el tubo digestivo, la pleura y el mismo pulmón.</p><p id="p0600" class="elsevierStylePara elsevierViewall">La infección desencadena en el huésped una respuesta inmune de hiperreactividad celular tardía, responsable de las manifestaciones clínicas e histológicas, que tarda de 2-10 semanas en desarrollarse completamente y se revela por la aparición de una reacción tuberculínica positiva. Sólo el 5 % de los infectados desarrollarán TB primaria <a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bb0030"><span class="elsevierStyleSup">6</span></a>. En un 10 % de los infectados se producirá la enfermedad meses o años después por reactivación de bacilos en estado latente, produciendo así la forma de TB en la que se detectan la mayoría de los casos, la TBP de reactivación (postprimaria) <a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bb0030"><span class="elsevierStyleSup">6</span></a>. Esta última presentación es la contagiosa. El potencial de infectividad de un paciente con TBP depende básicamente de la cantidad de bacilos que contienen sus secreciones y de la frecuencia de la tos. La posibilidad de contagiarse dependerá del estado de inmunidad del huésped expuesto y de lo frecuente que sea la exposición. Una persona con TBP arroja micobacterias al medio ambiente en sus secreciones respiratorias, pero la luz ultravioleta del sol las mata rápidamente. En condiciones de baja ventilación y poca luz solar, los bacilos suspendidos en el aire son viables durante 3-5 días, creando así la ocasión para que sean inhalados por otra persona <a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bb0030"><span class="elsevierStyleSup">6</span></a>. Los mecanismos de transmisión de la TBP y sus manifestaciones clínicas nos competen, ya que algunos de los casos de TBC se presentan de manera simultánea con TBP o con antecedentes de la misma. La TBC raramente es primaria.</p></span><span id="s0015" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="st0015">Tuberculosis cutánea</span><p id="p0025" class="elsevierStylePara elsevierViewall">La TBC ofrece un reto diagnóstico: las manifestaciones son diversas, las lesiones dermatológicas típicas son raras y la identificación del bacilo en tinciones o cultivos es inusual. La afección cutánea puede ocurrir por infección de la piel de manera aislada o en conjunto con infección en otros órganos, es decir, como TB diseminada. La <a class="elsevierStyleCrossRef" href="#t0005">tabla 1</a> resume las principales características de cada una de estas formas de presentación de la TBC. Las lesiones causadas por inoculación directa de una fuente externa suelen manifestarse como chancro tuberculoso, TB verrugosa (<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#f0005">fig. 1</a>) y, ocasionalmente, como lupus <span class="elsevierStyleItalic">vulgaris.</span> La afectación cutánea desde una fuente endógena puede aparecer como escrofuloderma (<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#f0010">fig. 2</a>), TB miliar aguda, TB gomosa, lupus <span class="elsevierStyleItalic">vulgaris</span> y TB orificial. Esta última usualmente se observa en pacientes con afección pulmonar, intestinal o anogenital, siendo la boca el sitio más frecuentemente afectado <a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bb0045"><span class="elsevierStyleSup">9,10</span></a>. El lupus vulgar es la forma clínica más frecuente de TBC en países industrializados, hasta el 40 % de los pacientes presentan linfadenitis tuberculosa asociada y el 10-20 % de los casos se asocian a TBP u ósea y se supone que son estos los focos de infección primaria <a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bb0015"><span class="elsevierStyleSup">3,4,11-13</span></a>. Sin embargo, el tipo escrofuloderma es el que se asocia con más frecuencia con TBP activa <a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bb0020"><span class="elsevierStyleSup">4</span></a>.</p><elsevierMultimedia ident="t0005"></elsevierMultimedia><elsevierMultimedia ident="f0005"></elsevierMultimedia><elsevierMultimedia ident="f0010"></elsevierMultimedia><p id="p0030" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Además de las lesiones infecciosas se pueden presentar erupciones cutáneas secundarias no a infección, sino a fenómenos inmunes generados por la infección a distancia. Estas lesiones se llaman tubercúlides y existen tres variedades: papulonecróticas, liquen <span class="elsevierStyleItalic">escrofulosum</span> y eritema indurado <a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bb0045"><span class="elsevierStyleSup">9,10</span></a>. El diagnóstico de la TBC se complica al considerar los posibles diagnósticos diferenciales: lesiones por micobacteriosis atípicas u otras dermatosis infecciosas (sífilis, esporotricosis, cromomicosis, actinomicosis), acné conglobata por mencionar algunas <a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bb0055"><span class="elsevierStyleSup">11</span></a>. La presentación clínica no suele ser suficiente para un diagnóstico preciso: las lesiones despiertan la sospecha clínica, pero es necesario confirmar el diagnóstico con pruebas complementarias. Las manifestaciones sistémicas características de la TBP, como fiebre y pérdida de peso, son inusuales en las formas cutáneas. Su presencia debe orientar hacia una enfermedad sistémica. De la misma forma, la presencia de síntomas respiratorios como tos y hemoptisis sugerirán la presencia de enfermedad pulmonar coexistente. En estos casos se debe dirigir los esfuerzos diagnósticos a la infección en el pulmón, ya que la identificación es más fácil y la afección cutánea se diagnosticaría por inferencia. En pacientes con infección por el virus de la inmunodeficiencia humana (VIH) y otras formas de inmunosupresión las lesiones cutáneas más frecuentes incluyen la forma miliar asociada o no a nódulo subcutáneos, así como la presencia de pústulas que semejan foliculitis.</p></span><span id="s0020" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="st0020">Diagnóstico</span><p id="p0035" class="elsevierStylePara elsevierViewall">El diagnóstico de la enfermedad tuberculosa se basa en 4 parámetros que incluyen el cuadro clínico, el estudio histopatológico, el cultivo y la identificación del ADN mediante la reacción en cadena de la polimerasa (PCR por sus siglas en inglés) <a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bb0070"><span class="elsevierStyleSup">14</span></a>. Cada vez se encuentran nuevos métodos que intentan acelerar el diagnóstico de la TB con una sensibilidad y especificidad adecuadas. La mayoría de ellos se enfocan primordialmente al diagnóstico de la TBP, pero podrían ser útiles en las formas extrapulmonares, como la TBC <a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bb0055"><span class="elsevierStyleSup">11,14,15</span></a>.</p><p id="p0040" class="elsevierStylePara elsevierViewall">A continuación revisaremos los diferentes procedimientos diagnósticos más utilizados en la actualidad en la TB en general y su aplicación en la investigación de la TBC.</p><span id="s0025" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="st0025">Diagnóstico histopatológico</span><p id="p0045" class="elsevierStylePara elsevierViewall">El estudio histopatológico de las biopsias cutáneas revela que las diferentes formas de presentación pueden tener hallazgos similares, pero existen datos característicos que pueden orientar a un tipo específico de TBC <a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bb0045"><span class="elsevierStyleSup">9-11</span></a>. En el caso del chancro tuberculoso, la forma aguda muestra una inflamación neutrofílica con necrosis inespecífica y en ocasiones hay bacilos presentes, mientras que en la forma crónica existen granulomas con caseificación central, células epiteloides, células gigantes de Langerhans y los bacilos suelen estar ausentes. En la TB verrugosa temprana existe inflamación aguda en la epidermis, hiperplasia pseudoepiteliomatosa y microabscesos en la dermis superficial; en ocasiones pueden observarse bacilos y focos granulomatosos. En el escrofuloderma es posible aislar bacilos del pus presente en las lesiones; además, en la dermis profunda se observa caseificación y necrosis. Los bacilos pueden observarse más fácilmente en la forma orificial junto con cambios inespecíficos, como necrosis y caseificación en la dermis profunda. La presencia de tubérculos bien desarrollados con escasa caseificación y cambios inflamatorios inespecíficos y la ausencia de bacilos pueden encontrarse en el lupus <span class="elsevierStyleItalic">vulgaris.</span> La <span class="elsevierStyleItalic">tubeculosis gomosa</span> puede presentar formación masiva de abscesos y necrosis y las tinciones para Mtb suelen revelar gran cantidad de bacilos. Por último, en la TB miliar aguda existen abundantes bacilos, necrosis e infiltrado inflamatorio inespecífico en ocasiones desarrollando microabscesos. El estudio histopatológico es útil, especialmente en el chancro tuberculoso, lupus <span class="elsevierStyleItalic">vulgaris,</span> TB gomosa, TB aguda miliar y en la forma orificial <a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bb0045"><span class="elsevierStyleSup">9-13</span></a>.</p></span><span id="s0030" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="st0030">Diagnóstico por pruebas: tinciones y cultivos</span><p id="p0050" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Las micobacterias tienen una pared rica en lípidos complejos que les confieren propiedades características de tinción en el laboratorio. La pared lipídica de los bacilos no permite que una mezcla de alcohol ácido penetre libremente en el interior de la bacteria. De ahí el término de bacilos ácido-alcohol resistentes (BAAR), situación que para nada refleja la vulnerabilidad de la micobacteria a dichas sustancias. La observación de BAAR al microscopio en tinciones de secreciones o tejidos es la primera evidencia de la presencia de micobacterias, sin que necesariamente signifique que se trate de Mtb, pero nos permitirá iniciar el tratamiento empírico en caso de reunir la sospecha clínica suficiente. Otras causas de BAAR positivo son los géneros <span class="elsevierStyleItalic">Nocardia, Corynebacterium,</span> micobacterias no tuberculosas y artefactos. Las técnicas de tinción incluyen Ziehl-Neelsen, Kinyoun y técnicas fluorocrómicas con auramina-rodamina. La más utilizada es la tinción de Ziehl-Neelsen. Se necesitan ≥ 10<span class="elsevierStyleSup">4</span> bacterias por mililitro para obtener un diagnóstico positivo, por lo que su utilidad es limitada en muestras paucibacilares, hecho habitual en las formas extrapulmonares, como la TBC. La sensibilidad en muestras pulmonares varía de un 40 a un 80 %. Por lo anterior se puede concluir que el tener una tinción de BAAR negativa no descarta el diagnóstico de tuberculosis <a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bb0080"><span class="elsevierStyleSup">16</span></a>.</p><p id="p0055" class="elsevierStylePara elsevierViewall">El cultivo se considera el estándar de oro para el diagnóstico de TB activa, su sensibilidad y especificidad en muestras pulmonares es del 80 y 99 %, respectivamente, pero es significativamente menor en muestras cutáneas. El cultivo de muestras cutáneas es necesario para el diagnóstico, especialmente en aquellos pacientes con sida o que reciben fármacos inmunosupresores, ya que en estos casos las manifestaciones cutáneas y las lesiones histopatológicas suelen ser atípicas. En el lupus <span class="elsevierStyleItalic">vulgaris</span> el cultivo sólo es positivo en el 6 % de los casos <a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bb0005"><span class="elsevierStyleSup">1</span></a>. Los medios de cultivo más utilizados para el asilamiento de Mtb son aquellos que tienen como base el huevo (Lowenstein-Jensen [LJ]) y los semisintéticos con agar (7<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>H10 y 7<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>H11 de Middlebrook) <a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bb0030"><span class="elsevierStyleSup">6</span></a>. Los cultivos sólidos tradicionales como el LJ tienen la desventaja de demorarse entre 4 a 8 semanas en la obtención de un resultado <a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bb0080"><span class="elsevierStyleSup">16</span></a>. El uso de medios líquidos permite acelerar el crecimiento y se han diseñado mecanismos ingeniosos que permiten detectar crecimiento en tiempos tan cortos como en 3 a 7 días. Dentro de estas técnicas de cultivo rápido las más usadas son el BACTEC® en sus versiones radiométrica (BACTEC® 460) o fluorimétrica (BACTEC® 960/MGIT) <a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bb0085"><span class="elsevierStyleSup">17</span></a>. El principio de estas técnicas se basa en la liberación de un marcador (radiactivo o fluorocromo) de un metabolito incluido en el medio de cultivo que es utilizado por la micobacteria. La liberación del marcador puede ser detectada con un equipo especial aun antes de que las colonias de micobacterias sean visibles. Además de la identificación de las diferentes micobacterias es posible hacer pruebas de susceptibilidad a fármacos. En un metanálisis de 10 estudios los sistemas BACTEC® 960/MGIT y BACTEC® 460 mostraron una sensibilidad y especificidad para la detección de micobacterias del 81,5 y 99,6 % y del 85,8 y 99,9 % respectivamente<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bb0085"><span class="elsevierStyleSup">17</span></a>. El BACTEC® 460 tiene el inconveniente del empleo de radiactividad, haciendo su empleo difícil y complicado. La combinación de 960/MGIT y BACTEC® 460 con medio sólido convencional LJ aumenta la sensibilidad a un 87,7 y 89,7 %, respectivamente <a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bb0080"><span class="elsevierStyleSup">16,17</span></a>. En general, la sensibilidad de los cultivos es mayor que la de la baciloscopia, ya que se requieren muy pocos bacilos para tener un resultado positivo. Se pueden hacer cultivos de las biopsias teniendo cuidado de que estas se conserven en solución salina (no formol) y que idealmente se tomen antes de haber iniciado el tratamiento antituberculoso.</p><p id="p0060" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Umapathy et al realizaron un estudio en donde encontraron confirmación bacteriológica (en medio LJ + piruvato + agar 7<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>H11) o histológica en el 88 % de 193 muestras estudiadas para TBC, lo cual se considera un alto porcentaje de positividad <a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bb0090"><span class="elsevierStyleSup">18</span></a>.</p><p id="p0065" class="elsevierStylePara elsevierViewall">El medio de cultivo bifásico no radiométrico (MB-Septi-Check®) utiliza frascos de 20<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>ml de caldo 7<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>H12 a los que se agrega en la parte superior un dispositivo que contiene diferentes medios sólidos. Las ventajas sobre el BACTEC® incluyen mayor sensibilidad y crecimiento sobre la fase sólida para practicar pruebas de identificación, sin la necesidad de hacer resiembras, y sus desventajas implican una detección de crecimiento más lenta y no permite realizar estudios de sensibilidad <span class="elsevierStyleItalic">in vitro</span><a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bb0030"><span class="elsevierStyleSup">6,16,17</span></a><span class="elsevierStyleItalic">.</span></p><p id="p0070" class="elsevierStylePara elsevierViewall">El incremento de las infecciones diseminadas por <span class="elsevierStyleItalic">M.avium-intracellulare</span> y Mtb en pacientes con sida ha estimulado el desarrollo de técnicas que permitan su detección en sangre (hemocultivo); las más eficaces son las de lisis-centrifugación y las radiométricas <a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bb0030"><span class="elsevierStyleSup">6</span></a>. La principal ventaja de la lisis-centrifugación es que permite cuantificar el número de bacterias por mililitro de sangre y controlar seriadamente la eficacia del tratamiento. El hemocultivo se indica principalmente en pacientes con sida con recuento de linfocitos CD4<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>+ < 50/μl y fiebre de origen desconocido.</p></span><span id="s0035" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="st0035">Amplificación de ácidos nucleicos (prueba de reacción en cadena de la polimerasa)</span><p id="p0075" class="elsevierStylePara elsevierViewall">La amplificación de ácidos nucleicos usando la PCR ha revolucionado la microbiología, facilitando la detección directa y la identificación de agentes infecciosos en muestras clínicas en un período muy corto. La PCR implica la amplificación <span class="elsevierStyleItalic">in vitro</span> de secuencias de ADN específicas del microorganismo y constituye una herramienta prometedora en el diagnóstico de TBP y de varias formas de TBC, especialmente aquellas paucibacilares como el lupus <span class="elsevierStyleItalic">vulgaris</span> y la TB verrugosa <a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bb0095"><span class="elsevierStyleSup">19,20</span></a>. Es capaz de demostrar la presencia de fragmentos de ADN micobacterianos en muestras biológicas con resultado negativo en la tinción de Ziehl-Neelsen o en el cultivo, lo que resulta muy útil en infecciones no bacilíferas, en pacientes con cuadros clínicos atípicos asociados a inmunosupresión o a infección por VIH <a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bb0100"><span class="elsevierStyleSup">20,21</span></a>. La PCR genera resultados satisfactorios a partir de 100 bacilos por muestra en cuestión de horas <a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bb0080"><span class="elsevierStyleSup">16</span></a>. Sin embargo, esta técnica no está disponible en muchos países, en especial en aquellos en vías de desarrollo.</p><p id="p0080" class="elsevierStylePara elsevierViewall">En estudios previos la utilidad de la PCR ha sido mayor en individuos que presentan lesiones nodulares diseminadas o lesiones ulceradas en el contexto de inmunosupresión y que han demostrado bacilos positivos, por lo que la PCR no se utiliza de rutina <a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bb0110"><span class="elsevierStyleSup">22</span></a>. El método de la PCR ofrece un diagnóstico rápido (todo el proceso tarda alrededor de 5 días), mucho menor que los métodos convencionales antes mencionados <a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bb0040"><span class="elsevierStyleSup">8,23</span></a>. La sensibilidad de la PCR ha demostrado ser mejor que el examen directo microscópico y comparable a la del cultivo, especialmente cuando se trata de lupus <span class="elsevierStyleItalic">vulgaris</span><a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bb0035"><span class="elsevierStyleSup">7,8,20</span></a><span class="elsevierStyleItalic">.</span> Asimismo, es una herramienta útil para diferenciar Mtb de otras especies de micobacterias <a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bb0120"><span class="elsevierStyleSup">24</span></a>. La sensibilidad de la PCR se ve limitada cuando se utilizan especímenes BAAR negativos o muestras paucibacilares; en general, se habla de una sensibilidad del 50-72 % en este tipo de especímenes <a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bb0035"><span class="elsevierStyleSup">7,21-23</span></a>.</p><p id="p0085" class="elsevierStylePara elsevierViewall">La técnica de la PCR puede realizarse en biopsias en fresco o en tejido fijado en parafina. En este último caso se incrementa la posibilidad de falsos negativos debido a la degradación del ADN durante el proceso de fijación. Se ha sugerido que si se utiliza tejido para la PCR de más de 5 años, se reduce significativamente la amplificación del ADN como resultado de su degradación <a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bb0085"><span class="elsevierStyleSup">17,21,23,24</span></a>.</p><p id="p0090" class="elsevierStylePara elsevierViewall">En un estudio Hsiao et al observaron que en las formas paucibacilares de TBC, con presentación clínica e histopatológica atípica, la PCR provee una detección rápida y sensible del ADN de Mtb en muestras fijadas en formalina y especímenes fijados en parafina <a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bb0070"><span class="elsevierStyleSup">14</span></a>. Asimismo, Senturk et al, en el año 2002, reportaron la eficacia de la PCR para Mtb en tejidos embebidos en parafina, donde concluyeron que la fijación en en este medio disminuye su sensibilidad <a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bb0075"><span class="elsevierStyleSup">15</span></a>.</p><p id="p0095" class="elsevierStylePara elsevierViewall">En otro estudio, Salian et al desarrollaron un ensayo basado en tejido (pulmonar y extrapulmonar) fijado en parafina para encontrar Mtb por medio de la PCR. La prueba pudo detectar desde 9 microorganismos en secciones de 5<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>μm fijadas en formalina y embebidas en parafina. De los 135 especímenes estudiados Mtb fue detectado en 11 de ellos que habían sido negativos por BAAR o por cultivo. La PCR dio un falso negativo en una muestra que resultó positiva en el cultivo, y se reportaron 7 falsos positivos que mostraron positividad en el BAAR, pero que no se cultivaron o fueron negativos en el cultivo. Con estos datos los autores concluyen que la PCR es una herramienta útil para detectar la presencia de Mtb en tejidos fijados en formalina y embebidos en parafina <a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bb0120"><span class="elsevierStyleSup">24</span></a>.</p><p id="p0100" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Se han identificado un considerable número de regiones/secuencias del genoma micobacteriano (por ejemplo IS6110, IS986, 65<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>kDa y 38<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>kDa) como antígenos blanco para la PCR. La mayoría de los estudios han utilizado la secuencia IS6110; sin embargo, también se ha reportado que hasta un 40 % de las muestras del sur de la India carecen de una o más copias de este antígeno. El antígeno proteico b o Pab (38<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>kDa) es una lipoproteína de transporte de fosfatasa serodominante en humanos, y se ha utilizado en aquellas muestras pulmonares y extrapulmonares en las que otras regiones o secuencias no han sido de ayuda para esclarecer el diagnóstico <a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bb0125"><span class="elsevierStyleSup">25-27</span></a>.</p><p id="p0105" class="elsevierStylePara elsevierViewall">La <span class="elsevierStyleItalic">Food and Drug Administration</span> (FDA) de Estados Unidos de América autorizó el uso clínico y la comercialización de tres pruebas diferentes de PCR: <span class="elsevierStyleItalic">Mycobacterium tuberculosis direct test</span> (Gen-Probe MTD), <span class="elsevierStyleItalic">Enhanced MTD</span> y el <span class="elsevierStyleItalic">Amplicor Mycobacterium tuberculosis test.</span> Todas ellas se aprobaron para el estudio de TBP. Según los datos de la FDA la sensibilidad de estas pruebas para diagnosticar TBP comparadas con el cultivo es del 95 % en pacientes con BAAR positivo, pero sólo del 50 % en pacientes con BAAR negativo. La especificidad es superior al 95 % en ambas, sean BAAR positivo o negativo <a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bb0030"><span class="elsevierStyleSup">6,16</span></a>. Sin embargo, se llegó a la conclusión de que estas pruebas no resultaron ser tan exitosas como se esperaba, y que no sustituyen a las baciloscopias o cultivos. Se desconoce aún si estas pruebas pueden aplicarse a especímenes cutáneos y si serán o no de utilidad.</p></span><span id="s0040" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="st0040">Prueba de la tuberculina</span><p id="p0110" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Esta prueba pone de manifiesto la primoinfección en el paciente por medio de un estado de hipersensibilidad del organismo frente a las proteínas del bacilo tuberculoso. Se utiliza primordialmente para apoyar el diagnóstico de sospecha de TB o para detectar una infección tuberculosa latente. Resulta positiva tras la infección por Mtb, aunque también puede serlo en caso de vacunación con el bacilo de Calmette-Guerin (BCG) o infección por micobacterias ambientales oportunistas <a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bb0030"><span class="elsevierStyleSup">6,28</span></a>. La prueba de la tuberculina se realiza inyectando 5 U (0,1<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>ml) de derivado proteico purificado (PPD) de froma intradérmica en la cara anterior del antebrazo y se considera positiva al obtener una induración visible y palpable en el sitio de la inoculación superior a 10<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mm de diámetro; puede acompañarse de edema, eritema, vesiculación y en ocasiones necrosis y linfadenitis regional <a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bb0140"><span class="elsevierStyleSup">28</span></a>. La lectura se realiza a las 72 horas de la aplicación, midiendo el diámetro de la induración en milímetros, transversal al eje longitudinal del antebrazo. En pacientes con infección por el VIH una lectura ≥ 5<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mm se considera positiva; así, en los sujetos sin factores de riesgo y con antecedentes de vacunación con BCG una induración ≥ 15<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mm debe considerarse positiva. Se estima que la reacción a la tuberculina es negativa en un elevado porcentaje de casos de sujetos positivos para el VIH, oscilando entre el 30 y el 50 % <a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bb0030"><span class="elsevierStyleSup">6</span></a>.</p><p id="p0115" class="elsevierStylePara elsevierViewall">La positividad de la prueba de la tuberculina o PPD no indica una infección activa, ya que también será positiva en casos de infección latente o infección previa <a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bb0030"><span class="elsevierStyleSup">6,28</span></a>. La prueba de la tuberculina está indicada en todos los casos en que interese confirmar o descartar la infección tuberculosa y no haya contraindicaciones para la misma. Sin embargo, su interpretación depende de factores tales como la inmunosupresión del paciente y la técnica de aplicación. Los resultados falsos negativos pueden observarse en infecciones sistémicas graves, incluyendo la propia TB, y estados de inmunosupresión.</p></span><span id="s0045" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="st0045">Cromatografía</span><p id="p0120" class="elsevierStylePara elsevierViewall">La principal utilidad de esta prueba es la identificación de las diferentes especies de micobacterias una vez que se tiene un cultivo positivo. Las micobacterias poseen una pared celular muy rica en lípidos, y los ácidos micólicos son característicos de este género. Estos pueden separarse con relativa facilidad en ésteres metílicos por cromatografía en capa fina en gel de sílice. La identificación definitiva se realiza por cromatografía de gases. La utilidad de esta técnica en la TBC es muy limitada <a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bb0030"><span class="elsevierStyleSup">6</span></a>.</p></span><span id="s0050" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="st0050">Serología y otros estudios inmunológicos</span><p id="p0125" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Los métodos serológicos prometían ser un procedimiento diagnóstico muy útil cuando se empezaron a utilizar hace más de 100 años. Los antígenos empleados se obtenían por métodos físico-químicos y los resultados fueron desalentadores. La serología evolucionó y aparecieron las pruebas de ensayo inmunoabsorbente ligado a enzima o <span class="elsevierStyleItalic">Enzyme-Linked ImmunoSorbent Assay</span> (ELISA) en 1976 <a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bb0145"><span class="elsevierStyleSup">29</span></a>, que emplea antígenos altamente purificados <a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bb0080"><span class="elsevierStyleSup">16,25,26</span></a>.</p><p id="p0130" class="elsevierStylePara elsevierViewall">En la actualidad se han analizado una serie de antígenos con mejores resultados, entre los que se encuentran las proteínas de Ag-60, 30<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>kDa, 38<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>kDa, Ag-60, complejo 45/47<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>kDa, Kp90, el antígeno DPEP o MPT32, el antígeno Mtb81 y el más reciente ESAT-6 <a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bb0145"><span class="elsevierStyleSup">29-34</span></a>. Los resultados de la serología pueden variar en relación con la naturaleza del antígeno, la pureza del mismo, la técnica usada (ELISA directa o indirecta), el sistema de detección, el estadio de la TB, si el paciente es bacilífero o no, si la afección es extrapulmonar y las condiciones asociadas, como infección por el VIH <a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bb0125"><span class="elsevierStyleSup">25,26</span></a>. La sensibilidad, usando los antígenos individuales, varía entre un 60-80 % con especificidades de 84-100 %. La combinación de antígenos en la misma prueba puede aumentar la sensibilidad, pero disminuye la especificidad <a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bb0175"><span class="elsevierStyleSup">35-37</span></a>. Ejemplos de estas combinaciones son el <span class="elsevierStyleItalic">TbF6</span> (102<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>kDa), poliproteína fusionada compuesta por 4 antígenos (38<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>kDa, Mtb8, Mtb11 y Mtb48) y el <span class="elsevierStyleItalic">TbF10</span> (55<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>kDa), que es una fusión de tres antígenos (38<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>kDa con Mtb8 y Mtb11). Aunque se dispone de paquetes comerciales de uso sencillo, la detección de anticuerpos no ha podido posicionarse como una prueba rutinaria de diagnóstico.</p><p id="p0135" class="elsevierStylePara elsevierViewall">En la era de los nuevos desarrollos tecnológicos, recientemente se han introducido en el mercado dos pruebas inmunológicas que inicialmente se destinaban al diagnóstico de la TB latente, pero que ahora se promueven para el estudio de casos activos: QuantiFERON <a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bb0140"><span class="elsevierStyleSup">28,37</span></a> y el ELISpot <a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bb0190"><span class="elsevierStyleSup">38,39</span></a>. Ambas se basan en la producción de interferón (IFN)-γ antígeno específico por células T en respuesta a los antígenos ESAT-6 y CFP-10 de Mtb <a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bb0200"><span class="elsevierStyleSup">40-43</span></a>. Esto sólo ocurre cuando los linfocitos T tienen memoria inmunológica generada por la infección previa con Mtb. QuantiFERON es un método actualmente aprobado por la FDA para el diagnóstico de la TB latente. Su sensibilidad y especificidad son del 89 y 99 %, respectivamente. Por otro lado, ELISpot presenta una sensibilidad del 98,8 % y una especificidad del 100 % <a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bb0030"><span class="elsevierStyleSup">6,44</span></a>. Estas pruebas tienen la ventaja de requerir sólo una muestra sanguínea y el resultado se obtiene en uno o dos días. Para QuantiFERON ya existen paquetes comerciales muy sencillos de usar. La lectura de la reacción, producción de IFN-γ, se hace mediante ELISA. Los procedimientos empleados en ELISpot, aunque usan el mismo principio, son más laboriosos. Se requiere la extracción de células para cultivarlas con los antígenos. El alto coste es el principal inconveniente de estas dos pruebas. Su principal ventaja es que discriminan muy bien aquellos sujetos que tienen vacunación con BCG, lo cual es un problema común. Mientras que el resultado cualitativo no discrimina entre infección latente o activa, el cuantitativo permite detectar enfermedad (infección activa).</p><p id="p0140" class="elsevierStylePara elsevierViewall">La adenosín desaminasa (ADA) es una enzima del catabolismo de las purinas. Se distribuye ampliamente en el organismo humano, pero su mayor actividad se encuentra en el tejido linfoide, fundamentalmente en los linfocitos T. Su principal utilidad es su determinación en el derrame de pacientes con TB pleural. Tiene una alta sensibilidad, pero una especificidad limitada. Sus niveles se elevan también en empiemas, linfomas, enfermedades autoinmunes y cáncer <a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bb0225"><span class="elsevierStyleSup">45</span></a>. Asimismo se ha utilizado en líquido de peritonitis, pericarditis y líquido cefalorraquídeo de origen tuberculoso. Su aplicación en el diagnóstico de la TBC es irrelevante.</p><p id="p0145" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Para mejorar la especificidad en el diagnóstico serológico de la TB es necesario utilizar antígenos específicos de Mtb y evitar la posible contaminación bacteriana durante el proceso de purificación. Algunos autores sugieren la combinación de antígenos específicos de Mtb purificados para incrementar la sensibilidad del serodiagnóstico de la TB <a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bb0220"><span class="elsevierStyleSup">44</span></a>. En conclusión, el diagnóstico serológico de la TB no puede recomendarse para uso general, y aún se desconoce su utilidad en casos de TB extrapulmonar.</p></span></span><span id="s0055" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="st0055">Conclusiones</span><p id="p0150" class="elsevierStylePara elsevierViewall">La TB en todas sus formas continúa siendo un problema universal de salud, así como un reto para el desarrollo de herramientas diagnósticas que provean un resultado específico, sensible, rápido y accesible para el paciente.</p><p id="p0155" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Los nuevos métodos diagnósticos utilizados en la actualidad se han enfocado en la TBP; se desconoce si alguno de estos pudiera tener alguna aplicación en las formas extrapulmonares, especialmente en la TBC. Para ello hace falta la aplicación de los mismos a casos de TBC, lo cual puede resultar difícil por la baja incidencia de ésta.</p><p id="p0160" class="elsevierStylePara elsevierViewall">La realización del estudio histopatológico y el aislamiento de Mtb en especímenes cutáneos por cultivo o por PCR se consideran, hasta el momento, las mejores herramientas diagnósticas para la detección y el diagnóstico de la TBC.</p><p id="p0165" class="elsevierStylePara elsevierViewall">El criterio absoluto de TBC lo dicta el asilamiento del bacilo en el cultivo o la identificación de ADN micobacterial por PCR. Desafortunadamente, son pocas las instituciones o laboratorios que pueden costear tal procedimiento, en especial en los países en vías de desarrollo.</p><p id="p0175" class="elsevierStylePara elsevierViewall"><span class="elsevierStyleBold">Conflicto de intereses</span></p><p id="p0170" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Declaramos no tener ningún conflicto de intereses.</p></span></span>" "textoCompletoSecciones" => array:1 [ "secciones" => array:10 [ 0 => array:2 [ "identificador" => "xres97801" "titulo" => "Resumen" ] 1 => array:2 [ "identificador" => "xpalclavsec84957" "titulo" => "Palabras clave" ] 2 => array:2 [ "identificador" => "xres97800" "titulo" => "Abstract" ] 3 => array:2 [ "identificador" => "xpalclavsec84956" "titulo" => "Key words" ] 4 => array:2 [ "identificador" => "s0005" "titulo" => "Introducción" ] 5 => array:2 [ "identificador" => "s0010" "titulo" => "Etiología y patogenia" ] 6 => array:2 [ "identificador" => "s0015" "titulo" => "Tuberculosis cutánea" ] 7 => array:3 [ "identificador" => "s0020" "titulo" => "Diagnóstico" "secciones" => array:6 [ 0 => array:2 [ "identificador" => "s0025" "titulo" => "Diagnóstico histopatológico" ] 1 => array:2 [ "identificador" => "s0030" "titulo" => "Diagnóstico por pruebas: tinciones y cultivos" ] 2 => array:2 [ "identificador" => "s0035" "titulo" => "Amplificación de ácidos nucleicos (prueba de reacción en cadena de la polimerasa)" ] 3 => array:2 [ "identificador" => "s0040" "titulo" => "Prueba de la tuberculina" ] 4 => array:2 [ "identificador" => "s0045" "titulo" => "Cromatografía" ] 5 => array:2 [ "identificador" => "s0050" "titulo" => "Serología y otros estudios inmunológicos" ] ] ] 8 => array:2 [ "identificador" => "s0055" "titulo" => "Conclusiones" ] 9 => array:1 [ "titulo" => "Bibliografía" ] ] ] "pdfFichero" => "main.pdf" "tienePdf" => true "fechaAceptado" => "2008-12-05" "PalabrasClave" => array:2 [ "es" => array:1 [ 0 => array:4 [ "clase" => "keyword" "titulo" => "Palabras clave" "identificador" => "xpalclavsec84957" "palabras" => array:3 [ 0 => "tuberculosis cutánea" 1 => "diagnóstico" 2 => "micobacteriosis" ] ] ] "en" => array:1 [ 0 => array:4 [ "clase" => "keyword" "titulo" => "Key words" "identificador" => "xpalclavsec84956" "palabras" => array:3 [ 0 => "cutaneous tuberculosis" 1 => "diagnosis" 2 => "mycobacteriosis" ] ] ] ] "tieneResumen" => true "resumen" => array:2 [ "es" => array:2 [ "titulo" => "Resumen" "resumen" => "<p id="sp0030" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">La tuberculosis pulmonar y cutánea está causada por <span class="elsevierStyleItalic">Mycobacterium tuberculosis</span>. Según datos de la Organización Mundial de la Salud (OMS) se presentan alrededor de 8 millones de casos nuevos al año. La incidencia de la tuberculosis cutánea se ha incrementado paralelamente con la de la tuberculosis pulmonar. La coinfección de <span class="elsevierStyleItalic">M. tuberculosis</span> y el virus de la inmunodeficiencia humana (VIH) se considera una de las principales causas. Los métodos diagnósticos utilizados en la actualidad para la identificación de tuberculosis tanto pulmonar como extrapulmonar dejan un amplio margen de error, retrasando el inicio de un tratamiento oportuno. Presentamos una revisión de dichos métodos y de su aplicación en las formas cutáneas. En conclusión, los hallazgos histopatológicos y el aislamiento de <span class="elsevierStyleItalic">M. tuberculosis</span> en cultivos de biopsias o por reacción en cadena de la polimerasa (PCR) son las herramientas diagnósticas más útiles para la tuberculosis cutánea.</p>" ] "en" => array:2 [ "titulo" => "Abstract" "resumen" => "<p id="sp0035" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">Pulmonary and cutaneous tuberculosis are caused by <span class="elsevierStyleItalic">Mycobacterium tuberculosis</span>. According to data from the World Health Organization, there are around 8 million new cases per year. The incidence of cutaneous tuberculosis has risen in parallel with that of pulmonary tuberculosis, and coinfection by <span class="elsevierStyleItalic">M tuberculosis</span> and human immunodeficiency virus is considered to be one of the main causes. Current diagnostic methods for pulmonary and extrapulmonary tuberculosis are far from perfect, leading to a delay in starting appropriate therapy. We present a review of these diagnostic methods and of their use in the cutaneous forms. In conclusion, histopathologic findings and isolation of <span class="elsevierStyleItalic">M tuberculosis</span> in cultures of biopsy material or by polymerase chain reaction are the most useful diagnostic tools in cutaneous tuberculosis.</p>" ] ] "multimedia" => array:3 [ 0 => array:7 [ "identificador" => "f0005" "etiqueta" => "Figura 1" "tipo" => "MULTIMEDIAFIGURA" "mostrarFloat" => true "mostrarDisplay" => false "figura" => array:1 [ 0 => array:4 [ "imagen" => "gr1.jpeg" "Alto" => 718 "Ancho" => 957 "Tamanyo" => 157359 ] ] "descripcion" => array:1 [ "es" => "<p id="sp0005" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">Tuberculosis cutánea de forma verrugosa.</p>" ] ] 1 => array:7 [ "identificador" => "f0010" "etiqueta" => "Figura 2" "tipo" => "MULTIMEDIAFIGURA" "mostrarFloat" => true "mostrarDisplay" => false "figura" => array:1 [ 0 => array:4 [ "imagen" => "gr2.jpeg" "Alto" => 855 "Ancho" => 957 "Tamanyo" => 120023 ] ] "descripcion" => array:1 [ "es" => "<p id="sp0010" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">Tuberculosis cutánea en forma de escrofuloderma.</p>" ] ] 2 => array:7 [ "identificador" => "t0005" "etiqueta" => "Tabla 1" "tipo" => "MULTIMEDIATABLA" "mostrarFloat" => true "mostrarDisplay" => false "tabla" => array:2 [ "leyenda" => "<p id="sp0020" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">Modificada y daptada de las citas bibliográficas 9-11.</p><p id="sp0025" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">BAAR: bacilo ácido-alcohol resistente; BCG: bacilo de Calmette-Guerin; PCR: reacción en cadena de la polimerasa; PPD: derivado proteico purificado.</p>" "tablatextoimagen" => array:1 [ 0 => array:2 [ "tabla" => array:1 [ 0 => """ <table border="0" frame="\n \t\t\t\t\tvoid\n \t\t\t\t" class=""><thead title="thead"><tr title="table-row"><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-head\n \t\t\t\t " align="" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t"> \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-head\n \t\t\t\t " align="center" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">Chancro tuberculoso \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-head\n \t\t\t\t " align="center" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">Tuberculosis verrugosa \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-head\n \t\t\t\t " align="center" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">Lupus vulgarís \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-head\n \t\t\t\t " align="center" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">Escrofuloderma \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-head\n \t\t\t\t " align="center" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">Tuberculosis miliar aguda \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-head\n \t\t\t\t " align="center" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">Tuberculosis gomosa \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-head\n \t\t\t\t " align="center" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">Tuberculosis orificial \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr></thead><tbody title="tbody"><tr title="table-row"><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">Transmisión \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">Inoculación directa a piel o mucosas. Sin inmunidad específica \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">Inoculación directa a piel o mucosas en una persona previamente infectada. Inmunidad moderada \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">Extensión directa. Diseminación hematógena o linfática desde un foco tuberculoso. Reinfección \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">Afectación por continuidad hacia la piel desde un foco de tuberculosis (ganglio, hueso). Puede ser posterior a BCG o PPD \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">Diseminación hematógena desde un foco pulmonar primario. Baja inmunidad \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="center" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">Diseminación hematógena aguda desde un foco primario durante períodos de bacteriemia y baja resistencia \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">Autoinoculación desde mucosas o piel adyacente a un orificio natural. Infección tuberculosa interna activa \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">Características clínicas \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">Inicialmente pápula pequeña o herida con poca tendencia a curar. Úlcera indolora de base granular o hemorrágica, puede estar cubierta por tejido necrótico \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">Pápula o pápulo-pústula con halo purpúrico inflamatorio, presenta hiperqueratosis: placa verrugosa. Asintomática \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">Mácula o pápula café-rojiza friable, de superficie lisa o descamativa que puede evolucionar a placa. Más frecuente en cara (nariz) \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">Nodulos subcutáneos firmes que se ulceran y desarrollan sinuosidades drenando material caseoso o purulento \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">Afecta a todo el cuerpo, especialmente al tronco. Lesiones maculares, papulares eritematosas o purpú ricas. Algunas veces vesículas, costras o necrosis central \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="center" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">Abscesos subcutáneos, fluctuantes, forman fístulas y úlceras. Únicos o múltiples en tronco, extremidades o cabeza \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">Afecta a mucosas y sitios periorificiales. Nodulo amarillento o rojizo que se ulcera con bordes disecados y apariencia en sacabocados \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">Histopatología \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">Infiltrado inlamatorio inespecífico; bacilos. Inflamación granulomatosa con caesificación, células epitelioides, células gigantes de Langhans y desaparición de bacilos \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">Infiltrado inflamatorio agudo en epidermis, hiperplasia pseudoepiteliomatosa, microabscesos en dermis superior, focos granulomatosos; bacilos ocasionalmente presentes \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">Tubérculos bien desarrollados con escasa caesificación, ausencia de bacilos; infiltrado inflamatorio inespecífico \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">Tejido de granulación, necrosis caseosa en dermis superior; pueden aislarse bacilos \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">Bacilos abundantes; necrosis; infiltrado inflamatorio inespecífico rodeado de macró fagos, algunas veces forman microabscesos \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="center" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">Formación de abscesos, necrosis masiva; las tinciones para BAAR revelan gran número de <span class="elsevierStyleItalic">M. tuberculosis</span> \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">Infiltrado inflamatorio inespecífico y necrosis; algunos tubérculos caseificados en la dermis profunda; los bacilos se observan fácilmente \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">Diagnóstico \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">Histopatología, cultivo, conversión de PPD (−) a (+), PCR \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">Histopatología, cultivo, respuesta al tratamiento antituberculoso \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">Histopatología, cultivo (50-60%) PPD (+++) PCR \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">Historia clínica de tuberculosis. Cultivo. PPD (+++) \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">Baciloscopia, histopatología, cultivo; presencia de otro foco de tuberculosis. PPD (−) \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="center" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">Histopatología, cultivo \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">Historia clínica de tuberculosis, histopatología y cultivo. PPD (−), PCR \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr></tbody></table> """ ] "imagenFichero" => array:1 [ 0 => "xTab183236.png" ] ] ] ] "descripcion" => array:1 [ "es" => "<p id="sp0015" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">Transmisión, características clínicas, histopatológicas y diagnóstico de las diferentes formas de tuberculosis cutánea</p>" ] ] ] "bibliografia" => array:2 [ "titulo" => "Bibliografía" "seccion" => array:1 [ 0 => array:2 [ "identificador" => "bs0005" "bibliografiaReferencia" => array:45 [ 0 => array:3 [ "identificador" => "bb0005" "etiqueta" => "1." 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2024 Noviembre | 69 | 3 | 72 |
2024 Octubre | 1874 | 95 | 1969 |
2024 Septiembre | 1751 | 90 | 1841 |
2024 Agosto | 1467 | 111 | 1578 |
2024 Julio | 2034 | 96 | 2130 |
2024 Junio | 1515 | 97 | 1612 |
2024 Mayo | 1723 | 102 | 1825 |
2024 Abril | 1745 | 100 | 1845 |
2024 Marzo | 1717 | 105 | 1822 |
2024 Febrero | 2578 | 71 | 2649 |
2024 Enero | 2341 | 55 | 2396 |
2023 Diciembre | 1796 | 59 | 1855 |
2023 Noviembre | 2122 | 75 | 2197 |
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2023 Septiembre | 2081 | 62 | 2143 |
2023 Agosto | 1921 | 74 | 1995 |
2023 Julio | 1903 | 72 | 1975 |
2023 Junio | 2033 | 67 | 2100 |
2023 Mayo | 1011 | 31 | 1042 |
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2023 Marzo | 1572 | 62 | 1634 |
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2021 Febrero | 351 | 82 | 433 |
2021 Enero | 207 | 43 | 250 |
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2020 Noviembre | 228 | 25 | 253 |
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2020 Septiembre | 241 | 51 | 292 |
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2020 Julio | 149 | 35 | 184 |
2020 Junio | 127 | 46 | 173 |
2020 Mayo | 165 | 36 | 201 |
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2017 Noviembre | 77 | 5 | 82 |
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2017 Septiembre | 58 | 6 | 64 |
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2016 Diciembre | 53 | 7 | 60 |
2016 Noviembre | 111 | 7 | 118 |
2016 Octubre | 123 | 11 | 134 |
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2016 Junio | 9 | 15 | 24 |
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2016 Marzo | 8 | 4 | 12 |
2016 Febrero | 7 | 4 | 11 |
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2015 Diciembre | 9 | 15 | 24 |
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2015 Septiembre | 11 | 14 | 25 |
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2015 Julio | 235 | 2 | 237 |
2015 Junio | 166 | 103 | 269 |
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2014 Diciembre | 160 | 23 | 183 |
2014 Noviembre | 208 | 16 | 224 |
2014 Octubre | 194 | 46 | 240 |
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2013 Diciembre | 106 | 22 | 128 |
2013 Noviembre | 109 | 19 | 128 |
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2013 Septiembre | 127 | 104 | 231 |
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2013 Julio | 112 | 63 | 175 |
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2013 Marzo | 191 | 23 | 214 |
2013 Febrero | 141 | 21 | 162 |
2013 Enero | 102 | 6 | 108 |
2012 Diciembre | 76 | 10 | 86 |
2012 Noviembre | 75 | 9 | 84 |
2012 Octubre | 82 | 2 | 84 |
2012 Septiembre | 13 | 8 | 21 |
2012 Agosto | 2 | 1 | 3 |
2011 Mayo | 3 | 0 | 3 |
2011 Abril | 3 | 0 | 3 |
2011 Marzo | 22 | 0 | 22 |
2011 Febrero | 38 | 0 | 38 |
2011 Enero | 17 | 0 | 17 |
2010 Diciembre | 17 | 0 | 17 |
2010 Noviembre | 13 | 0 | 13 |
2010 Octubre | 23 | 0 | 23 |
2010 Septiembre | 70 | 0 | 70 |
2010 Agosto | 30 | 0 | 30 |
2010 Julio | 8 | 0 | 8 |
2010 Junio | 28 | 0 | 28 |
2010 Mayo | 39 | 0 | 39 |
2010 Abril | 16 | 0 | 16 |
2010 Marzo | 13 | 0 | 13 |
2010 Febrero | 35 | 0 | 35 |
2010 Enero | 47 | 0 | 47 |
2009 Diciembre | 8 | 0 | 8 |
2009 Noviembre | 33 | 0 | 33 |
2009 Octubre | 40 | 0 | 40 |
2009 Septiembre | 79 | 0 | 79 |
2009 Agosto | 15 | 0 | 15 |