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El número indica el porcentaje de células positivas y la media de la intensidad de fluorescencia." ] ] ] "textoCompleto" => "<p class="elsevierStylePara">Este artículo fue premiado con el premio «Juan de Azúa» de la AEDV.</p><p class="elsevierStylePara"> INTRODUCCION</p><p class="elsevierStylePara">El melanoma es el tumor cutáneo más importante debido a dos factores: su elevada mortalidad y el aumento de su incidencia. Su frecuencia dentro de las neoplasias cutáneas oscila entre el 1,5 y el 7 %, pero representa el 65 % de las muertes por cáncer de piel, lo que indica su alto potencial de agresividad y capacidad metastásica. Los mecanismos biológicos que subyacen al desarrollo del melanoma están en pleno estudio en la actualidad. Encontrar terapias que puedan modificar la evolución natural del tumor o impedir su diseminación modificarían dramáticamente su pronóstico. Se han utilizado diversas estrategias durante los últimos años. Una herramienta de nueva generación que se está utilizando con gran éxito en investigación y que se quiere aplicar en terapéutica es el ARN de interferencia (ARNi).</p><p class="elsevierStylePara">Se sabe que hasta un 45 % del genoma humano es remanente de infecciones por retrovirus y transposones. El estudio de los mecanismos que utiliza el genoma para evitar la síntesis de proteínas a partir de estos genes descubrió un nuevo mecanismo: el silenciamiento genómico postranscripcional o silenciamiento del ARN<span class="elsevierStyleSup">1</span>. Este mecanismo parece muy extendido (hongos, plantas y animales) y muy conservado en la evolución, por lo que ha recibido el nombre de «sistema inmunológico» del genoma.</p><p class="elsevierStylePara">La técnica se ha revisado recientemente<span class="elsevierStyleSup">1-3</span> y brevemente implica la presencia intracelular de ARN pequeño de doble cadena (ARNdc). Este ARNdc es capaz de iniciar la degradación de ARN mensajeros (ARNm) con los que guarda homología. El mecanismo es muy específico y efectivo y no afecta a los sistemas generales de transcripción y traducción del ARN.</p><p class="elsevierStylePara">Esta técnica, usada por las células para defenderse de la síntesis de genes virales, se ha utilizado para estudiar la función de diversos genes. La síntesis de pequeñas cadenas de ARNdc (ARN de interferencia pequeños, ARNip) y su transfección dentro de las células permiten bloquear de manera específica la síntesis proteica de diversos genes en células eucariotas con una gran especificidad<span class="elsevierStyleSup">4</span>.</p><p class="elsevierStylePara">En la patogenia del melanoma están implicadas diversas proteínas celulares. Entre ellas, las tetraspaninas y, sobre todo, CD9, se han implicado con frecuencia en la regulación de la motilidad del melanoma<span class="elsevierStyleSup">5</span>. Estas proteínas, que tienen cuatro dominios transmembrana, se han implicado en la regulación del desarrollo, proliferación, activación y motilidad celulares y se ha visto que se acoplan a diversas vías de transducción de señales (revisado por Yáñez-Mo et al<span class="elsevierStyleSup">6</span> y Tarrant et al<span class="elsevierStyleSup">7</span>). Las tetraspaninas coprecipitan con diversas proteínas transmembrana y, en particular, con integrinas β1<span class="elsevierStyleSup">8</span>, una de las principales moléculas de adhesión de las células a matriz extracelular con efectos funcionales tanto en adhesión como en motilidad celular.</p><p class="elsevierStylePara">En este trabajo se ha explorado el efecto de ARNip de tetraspaninas CD9 y CD151 en la motilidad de células de melanoma.</p><p class="elsevierStylePara">MATERIAL Y MÉTODOS</p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold">Células de melanoma</span></p><p class="elsevierStylePara">Hemos utilizado la línea A375 de melanoma, proporcionada por Paloma Sánchez Mateos (Hospital Universitario Gregorio Marañón, Madrid) que se ha utilizado previamente<span class="elsevierStyleSup">9</span>. Las células crecieron en medio RPMI-1640 (Gibco BRL) suplementado con el 10 % de suero fetal bovino y 10 mM HEPES.</p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold"> Anticuerpos</span></p><p class="elsevierStylePara">Los anticuerpos monoclonales utilizados en este estudio se han descrito previamente: el anticuerpo activador de integrinas β1 TS2/16<span class="elsevierStyleSup">10</span>, el inhibidor de integrinas β1 VJ1/14<span class="elsevierStyleSup">11</span> y el anti-CD151<span class="elsevierStyleSup">12</span>. El anticuerpo anti-CD9 VJ1/10 fue obtenido en nuestro laboratorio<span class="elsevierStyleSup">13</span>. El anticuerpo monoclonal Ig (IgG<span class="elsevierStyleInf">1</span>, k) de la línea celular de mieloma P3X63 fue utilizado como control negativo.</p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold"> Inmunofluorescencia</span></p><p class="elsevierStylePara">Se cultivan las células A375 en cubreobjetos de cristal hasta alcanzar confluencia. Se fijan con paraformaldehído al 3,7 % en buffer de fosfato salino (PBS). Se bloquean los sitios de unión inespecíficos con una incubación en TNB (0,1 M Tris-HCl, 0,15 M NaCl, 0,5 % agente bloqueante; Boehringer Mannheim GmbH). Se incuban los cubreobjetos con el anticuerpo primario durante 30 min a 37 °C. Tras lavar con PBS, realizamos una segunda incubación con el anticuerpo secundario anti-ratón marcado con Alexa Fluor® 488 (Molecular Probes). Se evaluaron las muestras con un microscopio Leica con objetivos de inmersión de 60 aumentos. Se fotografiaron las muestras con una cámara CCD de alta capacidad COHU (COHU, Japón) acoplada al microscopio y conectada a una estación de trabajo Leica Q550CW. Se procesaron las imágenes usando el programa Leica Qfish versión 1.01 (Leica Imaging Systems. Ltd., Reino Unido).</p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold">Citometría de flujo</span></p><p class="elsevierStylePara">Se desprendieron las células con tripsina al 0,05 % con 0,02 % ácido etilendiaminotetraacético (EDTA). Tras lavarlas se resuspendieron en PBS. Se incubaron las células con los anticuerpos correspondientes durante 30 min a 4 °C. Después de lavarlas en PBS se incubaron durante 20 min a 4 °C con el anticuerpo secundario marcado con isotiocianato de fluoresceína (FITC) contra inmunoglobulinas de ratón (DAKOPATTS). Se lavaron las células con PBS y se resuspendieron en PBS con yoduro de propidio a 10 mg/ml y se analizaron en un citómetro de flujo FACScan (Becton Dickinson Labware). Analizamos las células según su tamaño y complejidad, excluyendo las células muertas que presentaban fluorescencia de ioduro de propidio.</p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold">Síntesis ARNi</span></p><p class="elsevierStylePara">Para reducir de manera selectiva la expresión de las tetraspaninas CD9 y CD151 se realizó un rastreo de diferentes secuencias diana exclusivas de cada una de estas proteínas usando casetes de expresión de ARNi (Ambion). Una vez determinadas las secuencias funcionales, se generaron dúplex de ARN correspondientes a dichas secuencias diana (Eurogentec).</p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold">Transfección celular</span></p><p class="elsevierStylePara">Los dúplex de ARN de interferencia se transfectaron en la línea celular A375 usando un reactivo especializado denominado oligofectamina (Invitrogen). Brevemente, se dividieron las células el día anterior a la transfección para realizarla a una confluencia celular del 30-50 % y se dejaron crecer en ausencia de antibióticos. Para transfectar, se resuspendió la oligofectamina en medio optimen sin suero ni antibióticos, incubándola a temperatura ambiente 10 min. A continuación, se diluyó el ARNi en este mismo medio y se mezcló con la oligofectamina resuspendida, dejando el ARNi a una concentración final de 200 nM. Se incubó la preparación 20 min a temperatura ambiente y se añadió al cultivo celular. La transfección se realizó durante 4 h a 37 °C y se paró añadiendo suero al medio.</p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold">Selección de células transfectadas</span></p><p class="elsevierStylePara">Se realizó una selección negativa de las células transfectadas. Para ello, se incubaron bolas magnéticas (Dynabeads) recubiertas con anticuerpos anti-CD9 y/o anti-CD151 con las células que habían sido transfectadas con los ARNi de CD9 y/o CD151, respectivamente. La incubación se realizó en rotación a 4 °C durante 5 min. Se seleccionaron las células que no se unieron a las bolas magnéticas, que correspondían con la población que expresaba menores niveles de tetraspaninas. Estas células fueron plaqueadas para realizar los experimentos funcionales de motilidad.</p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold">Modelo de migración celular</span></p><p class="elsevierStylePara">Los ensayos de migración se realizaron como se ha descrito previamente<span class="elsevierStyleSup">14</span>. Brevemente, se cultivaron las células hasta confluencia en placas de 24 pocillos (Costar, EE.UU.). Se cambiaron las células a medio basal con o sin los anticuerpos purificados a 20 mg/ml 30 min antes de provocar la rotura de la monocapa de células. Se arañó la monocapa con un rascador celular y se fotografió la herida en varios tiempos con una cámara Nikon Coolpix 995 (Nikon, EE.UU.) en un microscopio con objetivos invertidos. El área de la herida fue calculado utilizando el programa de análisis Adobe Photoshop 7.0 (Adobe Systems).</p><p class="elsevierStylePara"> RESULTADOS</p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold">Expresión de tetraspaninas CD9, CD151 y CD81 en células de melanoma</span></p><p class="elsevierStylePara">Se comprobó que las células A375 presentaban expresión en membrana de las tetraspaninas CD9, CD151 y CD81 por citometría y por inmunofluorescencia indirecta (fig. 1). La expresión resultó ser predominante en las zonas de interacción intercelular.</p><p class="elsevierStylePara"><img src="103v96n01-13071106fig01.jpg"></img></p><p class="elsevierStylePara">Fig. 1.--Expresión basal en membrana de tetraspaninas e integrinas b1 en células de melanoma. La expresión era mayor con integrinas b1 (TS2/16) y con CD9 medida por citometría. El número indica el porcentaje de células positivas y la media de la intensidad de fluorescencia.</p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold">Inhibición de CD9 y CD151 con ARNi</span></p><p class="elsevierStylePara">Tras la transfección con ARNi de células de melanoma, se realizó una selección negativa de las células que seguían presentando CD9 en la membrana. El estudio de citometría de flujo demostró una disminución de los niveles de CD9 y CD151 tanto en el porcentaje de células positivas como en la intensidad de la fluorescencia (fig. 2). El descenso fue más llamativo con CD151 que con CD9.</p><p class="elsevierStylePara"><img src="103v96n01-13071106fig02.jpg"></img></p><p class="elsevierStylePara">Fig. 2.--Inhibición en la expresión de CD9 y CD151 por ARNip. Se observa una disminución tanto en la intensidad de fluorescencia como en el porcentaje de células positivas evaluado por citometría. Se muestran los perfiles de citometría normales a la izquierda y los de las células transfectadas a la derecha con ARNip de CD9 y de CD151, respectivamente.</p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold">Inhibición de la migración de células de melanoma con ARNi</span></p><p class="elsevierStylePara">Se evaluó la migración de las células A375 en el modelo de curación de heridas. Tras realizar la herida en la monocapa se fotografió en varios tiempos la migración de las células para reparar la herida. Se utilizaron los tiempos de 0 y 24 h para el análisis.</p><p class="elsevierStylePara">Pudimos observar que las células A375 son capaces de cubrir casi en su totalidad la herida producida en la monocapa celular a las 24 h de la misma (fig. 3). Las células tratadas con ARNip de CD9 mostraron una menor migración que las células tratadas con ARNip de CD151.</p><p class="elsevierStylePara"><img src="103v96n01-13071106fig03.jpg"></img></p><p class="elsevierStylePara">Fig. 3.--Inhibición de la migración de células de melanoma tratadas con ARNip. Se observa a la izquierda un ejemplo de herida en la monocapa de células de melanoma. A la derecha se muestra la situación de la monocapa a las 24 h en las células control (sin transfectar), en las células tratadas con ARNip de CD9 y de CD151.</p><p class="elsevierStylePara">El estudio estadístico mostró diferencias significativas entre el control negativo (sin transfectar) y las células transfectadas con ARNi de CD9 pero no si se transfectaba sólo con ARNi de CD151 (fig. 4). Para determinar si existía un efecto sinérgico de ambas tetraspaninas, se realizó una cotransfección con los ARNip de CD9 y de CD151. Estas células mostraron una inhibición algo mayor que con el uso de CD9 exclusivamente. El uso de anticuerpos monoclonales para modificar la migración mostró una disminución con CD9 y con CD151 que no fueron significativas y que sí alcanzó significación estadística cuando se combinaron ambas.</p><p class="elsevierStylePara"><img src="103v96n01-13071106tab04.gif"></img></p><p class="elsevierStylePara">Fig. 4.--Efecto sobre la migración de células de melanoma tratadas con ARNip. Se muestra el efecto del tratamiento con ARNip de CD9, CD151 o de la transfección con ambos ARNip. También realizamos experimentos comprobando el efecto del uso de anticuerpos anti-CD9, anti-CD151 o el de ambos anticuerpos. Se muestra un experimento realizado por triplicado. La superficie de la herida cubierta por las células se midió en píxeles de fotografía cubierta.</p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold">Modulación de la expresión de tetraspaninas e integrinas tras tratamiento con ARNi</span></p><p class="elsevierStylePara">Como es conocida la interrelación de las diversas tetraspaninas entre sí y con integrinas b1, se decidió evaluar su expresión tras el tratamiento con el ARNip (fig. 5). Así se observó que las células tratadas con ARNip de CD9 mostraban una fuerte inhibición de CD9, pero un discreta modulación de CD151 y CD81. Sin embargo, el efecto más llamativo fue un aumento en la expresión de la integrina a3b1. Las células transfectadas con ARNip de CD151 mostraban una modulación más intensa de CD9 y CD81 con descenso de ambas tetraspaninas. Sin embargo, su efecto sobre la integrina a3b1 fue más leve. Finalmente, la doble transfección con ARNip de CD9 y CD151 resultó en datos que confirmaban el doble efecto debido a la bajada de expresión de ambas transfecciones, una gran inhibición de CD9, CD151 y aumento de la integrina a3b1. La expresión de CD81 no se vio afectada.</p><p class="elsevierStylePara"><img src="103v96n01-13071106tab05.gif"></img></p><p class="elsevierStylePara">Fig. 5.--Efecto de la transfección de células de melanoma con ARNi de CD9 y CD151 o una cotransfección con ambos ARNi. Media de la intensidad de fluorescencia de la tinción con cada monoclonal medida mediante citometría de flujo de células A375. Normalizado respecto al control sin transfección en cada anticuerpo monoclonal ensayado. Se muestra la media de dos experimentos.</p><p class="elsevierStylePara"> DISCUSION</p><p class="elsevierStylePara">Las tetraspaninas se han implicado en la regulación del desarrollo, proliferación, activación y motilidad celulares<span class="elsevierStyleSup">6</span> y se ha visto que se acoplan a diversas vías de transducción de señales<span class="elsevierStyleSup">7</span>.</p><p class="elsevierStylePara">La utilización de ARNi en el estudio de la actividad funcional de las proteínas celulares es muy reciente. Hasta ahora, se había intentado usar ARN antisentido, pero su aplicación era difícil y daba lugar a resultados confusos. En 1998 se utilizó por primera vez ARNdc<span class="elsevierStyleSup">15</span> con un efecto más claro y llamativo. Desde entonces se han multiplicado los trabajos en los que se usa ARNi tanto para estudio de la funcionalidad de diversas proteínas como de su posible papel en terapéutica.</p><p class="elsevierStylePara">En este trabajo se ha conseguido transfectar células de melanoma con ARNip de las tetraspaninas CD9 y CD151. Además se ha conseguido una inhibición importante de la expresión de membrana de ambas tetraspaninas, lo que no ha sido publicado hasta ahora. El efecto fue más intenso con CD151, cuya expresión basal era más pequeña, y menos intenso con CD9, probablemente por la altísima expresión basal de esta molécula. En este aspecto, aunque se utilizó una selección negativa de células que expresaban tanto CD9 como CD151, la eficacia fue menor con CD9.</p><p class="elsevierStylePara">El efecto de CD9 en las células de melanoma se ha estudiado en distintas ocasiones y con distintos abordajes<span class="elsevierStyleSup">5,9</span>.</p><p class="elsevierStylePara">Parece que el melanoma<span class="elsevierStyleSup">5</span>, como casi todos los carcinomas, tiene una disminución de CD9, a veces una ausencia de expresión, que podría colaborar en su capacidad metastatizante. Sin embargo, en los diversos trabajos publicados la expresión de CD9 en melanoma ha sido variable<span class="elsevierStyleSup">5,9</span>, y las células utilizadas en nuestro estudio mostraban una expresión basal alta de CD9.</p><p class="elsevierStylePara">En una línea de células de melanoma de ratón con gran capacidad metastatizante (BL6) se observó que, aunque expresaban CD9 en la membrana, la transfección con CD9 para producir su sobreexpresión provocaba una disminución en la motilidad<span class="elsevierStyleSup">16</span>.</p><p class="elsevierStylePara">Un estudio posterior precisó más el posible papel de CD9 en la migración de las células de melanoma. En células A375, el uso de anticuerpos anti-CD9 (VJ1/10) solo logró una ligera inhibición en la migración de las misma a través de filtros <span class="elsevierStyleItalic">transwell</span>. Sin embargo, si se utilizaba el mismo anticuerpo para interferir la migración a través de endotelio, el efecto conseguido fue de una inhibición importante<span class="elsevierStyleSup">9</span>. Estos datos sugerían que el papel de esta tetraspanina estaría en las uniones intercelulares heterotípicas (entre A375 y células endoteliales) y que su papel en las uniones a matriz extracelular sería poco importante.</p><p class="elsevierStylePara">Nuestro trabajo sugiere que, además de un papel directo de la expresión de CD9 en algunas situaciones como la migración transendotelial, su mayor o menor expresión puede estar ligada a modificaciones de otras tetraspaninas y de la integrina a3b1 y que estas otras modificaciones tengan un relevancia alta en la capacidad de migración de las células. La inhibición de la expresión de CD9 con ARNip provoca un aumento de la integrina a3b1 lo que probablemente condicione una menor migración celular al existir mayor adhesión a la matriz extracelular. Es interesante que, aunque la transfección con ARNip de CD151 producía un disminución de la expresión de CD9, no se producía el aumento de integrina a3b1 y tampoco una inhibición significativa de la migración de las células de melanoma.</p><p class="elsevierStylePara">Para poder explicar estos efectos <span class="elsevierStyleItalic">a priori</span> discordantes, podemos basarnos en distintos niveles de regulación de la expresión proteica. El ARNip de CD9 impide la síntesis de la proteína CD9 al destruir el ARNm de CD9. Sin embargo, la modulación en la expresión de CD9 provocada por la transfección con ARNip de CD151 puede ser a nivel postraduccional, o sea, una vez la proteína está sintetizada, impidiendo que la proteína alcance la membrana o que ésta sea funcional. El distinto mecanismo de regulación provocaría efectos diferentes. Nuestro grupo está actualmente implicado en la aclaración de esta diferencia.</p><p class="elsevierStylePara">En nuestros experimentos se ha demostrado que las células de melanoma pueden ser tratadas para disminuir su motilidad con ARNi. La utilización de este tipo de tratamientos, eficaces y altamente específicos, pueden ser una herramienta muy importante en el control clínico del melanoma.</p><p class="elsevierStylePara"> AGRADECIMIENTOS</p><p class="elsevierStylePara">Este trabajo ha sido financiado por el Fondo de Investigación Sanitaria (FIS) 01/1304 y por Industrial Farmacéutica Cantabria (IFC) dentro del proyecto TQS/2001-0044 adscrito al Departamento de Tecnologías Químicas y Sanitarias del Centro para el Desarrollo Tecnológico Industrial (CDTI). 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Se han utilizado distintos abordajes con el fin de encontrar una terapia efectiva, pero sin éxito. El ARN de interferencia (ARNi) es una técnica imprescindible para la investigación. Con esta técnica podemos silenciar selectivamente la expresión de proteínas (knockdown). Las tetraspaninas CD9 y CD151 son moléculas implicadas en la motilidad celular, incluidas las células de melanoma. Material y métodos. Línea de melanoma A375, anticuerpos monoclonales anti-CD9 y anti-CD151, y ARNi para CD9 y CD151. Técnicas de inmunofluorescencia, citometría de flujo, transfección celular, selección celular con bolas magnéticas y evaluación de la migración celular en modelo de curación de heridas. Resultados. Las células A375 expresan CD9 y CD151. Utilizando ARNi de CD9 y CD151 se ha conseguido inhibir la expresión de estas proteínas. Las células transfectadas con ARNi de CD9 mostraron una inhibición significativa de su motilidad. Discusión. Nosotros hemos conseguido silenciar la expresión de CD9 y CD151 usando técnicas de ARNi en la línea celular de melanoma A375. La reducción de CD9 produjo una inhibición de la motilidad celular, mientras que la interferencia de la expresión de CD151 tuvo un efecto más moderado. Estos datos apuntan a que el silenciamiento de tetraspaninas puede ser en un futuro una diana para el tratamiento del melanoma." ] "en" => array:1 [ "resumen" => "Introduction. Although 65 % of the deaths caused by skin cancer are due to melanomas, the possible causes that may explain the aggressiveness of this type of tumor are still unknown. Different approaches have been used to try to find an effective treatment, but they have been unsuccessful. Interference RNA (iRNA) is an essential technique for this research. With this technique, we can selectively «knock down» or silence protein expression. The tetraspanins CD9 and CD151 are molecules involved in cell motility, including melanoma cells. Material and methods. A375 melanoma cell line, anti-CD9 and anti-CD151 monoclonal antibodies, and iRNA against CD9 and CD151. Immunofluorescence techniques, flow cytometry, cell transfection, cell selection with magnetic beads and evaluation of cell migration in a wound-healing model. Results. The A375 cells express CD9 and CD151. By using iRNA against CD9 and CD151, we managed to inhibit the expression of these proteins. The cells transfected with iRNA against CD9 showed significant inhibition of their motility. Discussion. We managed to silence the expression of CD9 and CD151 using iRNA techniques in the A375 melanoma cell line. The reduction in CD9 caused the inhibition of cell motility, while the interference with CD151 expression had a more moderate effect. 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2022 Noviembre | 74 | 42 | 116 |
2022 Octubre | 74 | 33 | 107 |
2022 Septiembre | 78 | 50 | 128 |
2022 Agosto | 71 | 33 | 104 |
2022 Julio | 88 | 38 | 126 |
2022 Junio | 81 | 24 | 105 |
2022 Mayo | 69 | 33 | 102 |
2022 Abril | 41 | 47 | 88 |
2022 Marzo | 36 | 51 | 87 |
2022 Febrero | 45 | 33 | 78 |
2022 Enero | 45 | 43 | 88 |
2021 Diciembre | 31 | 38 | 69 |
2021 Noviembre | 40 | 44 | 84 |
2021 Octubre | 63 | 43 | 106 |
2021 Septiembre | 40 | 38 | 78 |
2021 Agosto | 37 | 26 | 63 |
2021 Julio | 37 | 39 | 76 |
2021 Junio | 44 | 23 | 67 |
2021 Mayo | 38 | 28 | 66 |
2021 Abril | 78 | 59 | 137 |
2021 Marzo | 88 | 25 | 113 |
2021 Febrero | 113 | 20 | 133 |
2021 Enero | 62 | 24 | 86 |
2020 Diciembre | 42 | 14 | 56 |
2020 Noviembre | 25 | 19 | 44 |
2020 Octubre | 31 | 15 | 46 |
2020 Septiembre | 34 | 22 | 56 |
2020 Agosto | 37 | 15 | 52 |
2020 Julio | 39 | 13 | 52 |
2020 Junio | 43 | 23 | 66 |
2020 Mayo | 40 | 19 | 59 |
2020 Abril | 34 | 15 | 49 |
2020 Marzo | 35 | 17 | 52 |
2020 Febrero | 1 | 1 | 2 |
2019 Diciembre | 0 | 2 | 2 |
2019 Octubre | 0 | 1 | 1 |
2019 Septiembre | 1 | 0 | 1 |
2019 Agosto | 1 | 0 | 1 |
2019 Julio | 0 | 1 | 1 |
2019 Junio | 10 | 2 | 12 |
2019 Mayo | 0 | 10 | 10 |
2019 Marzo | 2 | 6 | 8 |
2019 Febrero | 0 | 2 | 2 |
2019 Enero | 0 | 2 | 2 |
2018 Diciembre | 3 | 2 | 5 |
2018 Noviembre | 0 | 1 | 1 |
2018 Octubre | 13 | 2 | 15 |
2018 Septiembre | 2 | 0 | 2 |
2018 Marzo | 2 | 0 | 2 |
2018 Febrero | 25 | 4 | 29 |
2018 Enero | 27 | 9 | 36 |
2017 Diciembre | 48 | 10 | 58 |
2017 Noviembre | 25 | 12 | 37 |
2017 Octubre | 25 | 7 | 32 |
2017 Septiembre | 28 | 14 | 42 |
2017 Agosto | 20 | 9 | 29 |
2017 Julio | 20 | 9 | 29 |
2017 Junio | 26 | 18 | 44 |
2017 Mayo | 31 | 13 | 44 |
2017 Abril | 27 | 9 | 36 |
2017 Marzo | 30 | 42 | 72 |
2017 Febrero | 39 | 8 | 47 |
2017 Enero | 25 | 7 | 32 |
2016 Diciembre | 85 | 7 | 92 |
2016 Noviembre | 61 | 11 | 72 |
2016 Octubre | 61 | 23 | 84 |
2016 Septiembre | 68 | 13 | 81 |
2016 Agosto | 37 | 12 | 49 |
2016 Julio | 37 | 5 | 42 |
2016 Junio | 10 | 0 | 10 |
2016 Mayo | 6 | 0 | 6 |
2016 Abril | 4 | 0 | 4 |
2016 Marzo | 5 | 0 | 5 |
2016 Febrero | 8 | 0 | 8 |
2016 Enero | 10 | 22 | 32 |
2015 Diciembre | 9 | 0 | 9 |
2015 Noviembre | 12 | 6 | 18 |
2015 Octubre | 11 | 16 | 27 |
2015 Septiembre | 4 | 11 | 15 |
2015 Agosto | 11 | 8 | 19 |
2015 Julio | 43 | 1 | 44 |
2015 Junio | 38 | 3 | 41 |
2015 Mayo | 47 | 10 | 57 |
2015 Abril | 56 | 11 | 67 |
2015 Marzo | 28 | 6 | 34 |
2015 Febrero | 34 | 6 | 40 |
2015 Enero | 44 | 8 | 52 |
2014 Diciembre | 52 | 10 | 62 |
2014 Noviembre | 62 | 15 | 77 |
2014 Octubre | 63 | 9 | 72 |
2014 Septiembre | 45 | 20 | 65 |
2014 Agosto | 57 | 18 | 75 |
2014 Julio | 52 | 19 | 71 |
2014 Junio | 71 | 15 | 86 |
2014 Mayo | 76 | 24 | 100 |
2014 Abril | 51 | 13 | 64 |
2014 Marzo | 58 | 17 | 75 |
2014 Febrero | 27 | 16 | 43 |
2014 Enero | 48 | 12 | 60 |
2013 Diciembre | 62 | 28 | 90 |
2013 Noviembre | 36 | 14 | 50 |
2013 Octubre | 48 | 27 | 75 |
2013 Septiembre | 50 | 39 | 89 |
2013 Agosto | 38 | 27 | 65 |
2013 Julio | 50 | 48 | 98 |
2013 Junio | 47 | 52 | 99 |
2013 Mayo | 43 | 24 | 67 |
2013 Abril | 45 | 35 | 80 |
2013 Marzo | 41 | 14 | 55 |
2013 Febrero | 61 | 16 | 77 |
2013 Enero | 38 | 9 | 47 |
2012 Diciembre | 33 | 6 | 39 |
2012 Noviembre | 33 | 12 | 45 |
2012 Octubre | 32 | 6 | 38 |
2012 Septiembre | 9 | 1 | 10 |
2012 Agosto | 1 | 0 | 1 |
2011 Mayo | 10 | 0 | 10 |
2011 Abril | 12 | 0 | 12 |
2011 Marzo | 34 | 0 | 34 |
2011 Febrero | 30 | 0 | 30 |
2011 Enero | 34 | 0 | 34 |
2010 Diciembre | 24 | 0 | 24 |
2010 Noviembre | 19 | 0 | 19 |
2010 Octubre | 9 | 0 | 9 |
2010 Septiembre | 15 | 0 | 15 |
2010 Agosto | 3 | 0 | 3 |
2010 Julio | 15 | 0 | 15 |
2010 Junio | 34 | 0 | 34 |
2010 Mayo | 21 | 0 | 21 |
2010 Abril | 20 | 0 | 20 |
2010 Marzo | 16 | 0 | 16 |
2010 Febrero | 1 | 0 | 1 |
2010 Enero | 17 | 0 | 17 |
2009 Diciembre | 9 | 0 | 9 |
2009 Noviembre | 20 | 0 | 20 |
2009 Octubre | 13 | 0 | 13 |
2009 Septiembre | 29 | 0 | 29 |
2009 Agosto | 34 | 0 | 34 |
2009 Julio | 18 | 0 | 18 |
2009 Junio | 11 | 0 | 11 |
2009 Mayo | 20 | 0 | 20 |
2009 Abril | 18 | 0 | 18 |
2009 Marzo | 8 | 0 | 8 |
2009 Febrero | 14 | 0 | 14 |
2009 Enero | 12 | 0 | 12 |
2008 Diciembre | 16 | 0 | 16 |
2008 Noviembre | 19 | 0 | 19 |
2008 Octubre | 18 | 0 | 18 |
2008 Septiembre | 13 | 0 | 13 |
2008 Agosto | 12 | 0 | 12 |
2008 Julio | 26 | 0 | 26 |
2008 Junio | 29 | 0 | 29 |
2008 Mayo | 20 | 0 | 20 |
2008 Abril | 11 | 0 | 11 |
2008 Febrero | 1 | 0 | 1 |
2008 Enero | 2 | 0 | 2 |
2007 Diciembre | 4 | 0 | 4 |
2007 Octubre | 6 | 0 | 6 |
2007 Septiembre | 1 | 0 | 1 |
2007 Abril | 1 | 0 | 1 |
2007 Febrero | 3 | 0 | 3 |